Antifungal Activity and Synergism with Azoles of Polish Propolis - Publikacja - MOST Wiedzy

Wyszukiwarka

Antifungal Activity and Synergism with Azoles of Polish Propolis

Abstrakt

The aim of our work was to check if one of the products of natural origin, namely honey 19 bee propolis may be an alternative or supplement to currently used antifungal agents. The activity 20 of 50 ethanolic extracts of propolis (EEPs), harvested in Polish apiaries, was tested on a group of 69 21 clinical isolates of C. albicans. Most of the EEPs showed satisfactory activity, with minimum 22 fungicidal concentrations (MFC) mainly in the range of 0.08-1.25% (v/v). Eradication of biofilm 23 from polystyrene microtitration plates in 50% (MBEC50) required concentrations in the range of 24 0.04% (v/v) to more than 1.25% (v/v). High activity was also observed in eradication of biofilm 25 formed by C. glabrata and C. krusei on the surfaces of PVC and silicone catheters. EEPs at 26 subinhibitory concentrations inhibited yeast-to-mycelia morphological transformation of C. albicans 27 in liquid medium and mycelial growth on solid medium. A synergistic effect was observed for the 28 action of EEPs in combination with fluconazole (FLU) and voriconazole (VOR) against C. albicans. 29 In the presence of EEP at concentration as low as 0.02%, the MICs of FLU and VOR were 256 to 32 30 times lower in comparison to those of the drug alone. Evidences for the fungal cell membrane as 31 the most probable target of EEPs are presented.

Cytowania

  • 9

    CrossRef

  • 9

    Web of Science

  • 1 0

    Scopus

Informacje szczegółowe

Kategoria:
Publikacja w czasopiśmie
Typ:
publikacja w in. zagranicznym czasopiśmie naukowym (tylko język obcy)
Opublikowano w:
Pathogens nr 7, wydanie 2, strony 1 - 10,
ISSN: 2076-0817
Język:
angielski
Rok wydania:
2018
Opis bibliograficzny:
Gucwa K., Kusznierewicz B., Milewski S., Van Dijck P., Szweda P.. Antifungal Activity and Synergism with Azoles of Polish Propolis. Pathogens, 2018, Vol. 7, iss. 2, s.1-10
DOI:
Cyfrowy identyfikator dokumentu elektronicznego (otwiera się w nowej karcie) 10.3390/pathogens7020056
Bibliografia: test
  1. Leroy, O.; Gangneux, J.P.; Montravers, P.; Mira, J.P.; Gouin, F.; Sollet, J.P.; Carlet, J.; Reynes, J.; Rosenheim, M.; Regnier, B.; et al. Epidemiology, management, and risk factors for death of invasive Candida infections in critical care: A multicenter, prospective, observational study in France (2005-2006). Crit. Care Med. 2009, 37, 1612-1618. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  2. Kauffman, C.A. Treatment of Candidemia and Invasive Candidiasis in Adults. Available online: https: //www.uptodate.com (accessed on 31 August 2017). otwiera się w nowej karcie
  3. Szweda, P.; Gucwa, K.; Romanowska, E.; Dzierżanowska-Fangrat, K.; Naumiuk, Ł.; Brillowska-Dąbrowska, A.; Wojciechowska-Koszko, I.; Milewski, S. Mechanisms of azole resistance among clinical isolates of Candida glabrata in Poland. J. Med. Microbiol. 2015, 64, 610-619. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  4. Morio, F.; Jensen, R.H.; Le Pape, P.; Arendrup, M.C. Molecular basis of antifungal drug resistance in yeasts. Int. J. Antimicrob. Agents 2017, 50, 599-606. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  5. Farmakiotis, D.; Kontoyiannis, D.P. Epidemiology of antifungal resistance in human pathogenic yeasts: Current viewpoint and practical recommendations for management. Int. J. Antimicrob. Agents 2017, 50, 318-324. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  6. Zarnowski, R.; Westler, W.M.; Lacmbouh, G.A.; Marita, J.M.; Bothe, J.R.; Bernhardt, J.; Sahraoui, A.L.H.; Fontainei, J.; Sanchez, H.; Hatfeld, R.D.; et al. Novel entries in a fungal biofilm matrix encyclopedia. mBio 2014, 5, 1-13. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  7. Simone-Finstrom, M.; Spivak, M. Propolis and bee health: The natural history and significance of resin use by honey bees. Apidologie 2010, 41, 295-311. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  8. Burdock, G.A. Review of the biological properties and toxicity of bee propolis. Food Chem. Toxicol. 1998, 36, 347-363. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  9. Dobrowolski, J.W.; Vohora, S.B.; Sharma, K.; Shah, S.A.; Naqvi, S.A.H.; Dandiya, P.C. Antibacterial, antifungal, antiamoebic, antiinflammatory and antipyretic studies on propolis bee products. J. Ethnopharmacol. 1991, 35, 77-82. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  10. Marcucci, M.C. Propolis: Chemical composition, biological properties and therapeutic activity. Apidologie 1995, 26, 83-99. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  11. Lee, K.L.; Buckley, H.R.; Campbell, C.C. An amino acid liquid synthetic medium for the development of mycellal and yeast forms of Candida albicans. Med. Mycol. 1975, 13, 148-153. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  12. Falcão, S.I.; Vale, N.; Gomes, P.; Domingues, M.R.M.; Freire, C.; Cardoso, S.M.; Vilas-Boas, M. Phenolic profiling of Portuguese propolis by LC-MS spectrometry: Uncommon propolis rich in flavonoid glycosides. Phytochem. Anal. 2013, 24, 309-318. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  13. Szweda, P.; Gucwa, K.; Kurzyk, E.; Romanowska, E.; Dzierzanowska-Fangrat, K.; Zielinska Jurek, A.; Kus, P.M.; Milewski, S. Essential oils, silver nanoparticles and propolis as alternative agents against fluconazole resistant Candida albicans, Candida glabrata and Candida krusei clinical isolates. Indian J. Microbiol. 2015, 55, 175-183. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  14. Siqueira, A.B.S.; Rodriguez, L.R.N.d.A.; Santos, R.K.B.; Marinho, R.R.B.; Abreu, S.; Peixoto, R.F.; Gurgel, B.C.D.V. Antifungal activity of propolis against Candida species isolated from cases of chronic periodontitis. Braz. Oral Res. 2015, 29, 1-6. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  15. Tobaldini-Valerio, F.K.; Bonfim-Mendonça, P.S.; Rosseto, H.C.; Bruschi, M.L.; Henriques, M.; Negri, M.; Silva, S.; Svidzinski, T.I. Propolis: A potential natural product to fight Candida species infections. Future Microbiol. 2016, 11, 1035-1046. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  16. Bruschi, M.L.; Dota, K.F.D.; Consolaro, M.E.L.; Svidzinski, T.I.E. Antifungal activity of brazilian propolis microparticles against yeasts isolated from vulvovaginal candidiasis. Evid.-Based Complement. Altern. Med. 2011, 2011, 1-8. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  17. Pippi, B.; Lana, A.J.D.; Moraes, R.C.; Güez, C.M.; Machado, M.; de Oliveira, L.F.S.; Lino von Poser, G.; Fuentefria, A.M. In vitro evaluation of the acquisition of resistance, antifungal activity and synergism of Brazilian red propolis with antifungal drugs on Candida spp. J. Appl. Microbiol. 2015, 118, 839-850. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  18. Freires, I.A.; Queiroz, V.C.P.P.; Furletti, V.F.; Ikegaki, M.; de Alencar, S.M.; Duarte, M.C.T.; Rosalen, P.L. Chemical composition and antifungal potential of Brazilian propolis against Candida spp. J. Mycol. Med. 2016, 26, 122-132. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  19. Santos, V.R.; Gomes, R.T.; De Mesquita, R.A.; De Moura, M.D.G.; França, E.C.; De Aguiar, E.G.; Naves, M.D.; Abreu, J.A.S.; Abreu, S.R.L. Efficacy of brazilian propolis gel for the management of denture stomatitis: A pilot study. Phyther. Res. 2008, 22, 1544-1547. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  20. Santos, V.R.; Pimenta, F.J.G.S.; Aguiar, M.C.F.; Do Carmo, M.A.V.; Naves, M.D.; Mesquita, R.A. Oral candidiasis treatment with Brazilian ethanol propolis extract. Phyther. Res. 2005, 19, 652-654. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  21. Pina, G.D.M.S.; Lia, E.N.; Berretta, A.A.; Nascimento, A.P.; Torres, E.C.; Buszinski, A.F.M.; De Campos, T.A.; Coelho, E.B.; Martins, V.D.P. Efficacy of propolis on the denture stomatitis treatment in older adults: A multicentric randomized trial. Evid.-Based Complement. Altern. Med. 2017, 2017. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  22. Haghdoost, N.S.; Salehi, T.Z.; Khosravi, A.; Sharifzadeh, A. Activité antifongique et l'influence de propolis contre la formation de germ tube, facteur de virulence critique d'isolats cliniques de Candida albicans. J. Mycol. Med. 2016, 26, 298-305. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  23. Suleman, T.; van Vuuren, S.; Sandasi, M.; Viljoen, A.M. Antimicrobial activity and chemometric modelling of South African propolis. J. Appl. Microbiol. 2015, 119, 981-990. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  24. Massaro, C.F.; Simpson, J.B.; Powell, D.; Brooks, P. Chemical composition and antimicrobial activity of honeybee (Apis mellifera ligustica) propolis from subtropical eastern Australia. Sci. Nat. 2015, 102, 68. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  25. Lee, M.K.; Williams, L.E.; Warnock, D.W.; Arthington-Skaggs, B.A. Drug resistance genes and trailing growth in Candida albicans isolates. J. Antimicrob. Chemother. 2004, 53, 217-224. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  26. Zomorodian, K.; Bandegani, A.; Mirhendi, H.; Pakshir, K.; Alinejhad, N.; Fard, A.P. In vitro susceptibility and trailing growth effect of clinical isolates of candida species to azole drugs. Jundishapur J. Microbiol. 2016, 9, 1-6. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  27. Douglas, L.J. Medical importance of biofilms in Candida infections. Rev. Iberoam. Micol. 2002, 19, 139-143. [PubMed]
  28. Capoci, I.R.G.; Bonfim-Mendonça, P.D.S.; Arita, G.S.; Pereira, R.R.D.A.; Consolaro, M.E.L.; Bruschi, M.L.; Negri, M.; Svidzinski, T.I.E. Propolis is an efficient fungicide and inhibitor of biofilm production by vaginal Candida albicans. Evid.-Based Complement. Altern. Med. 2015, 2015, 1-9. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  29. Biswas, K.; Morschhäuser, J. The Mep2p ammonium permease controls nitrogen starvation-induced filamentous growth in Candida albicans. Mol. Microbiol. 2005, 56, 649-669. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  30. Franz, R.; Ruhnke, M.; Morschhäuser, J. Molecular aspects of fluconazole resistance development in Candida albicans. Mycoses 1999, 42, 453-458. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  31. Rex, J.H. Reference Method for Broth Dilution Antifungal Susceptibility Testing of Yeasts; Approved Standard-Third Edition; CLSI Document M27-A3; otwiera się w nowej karcie
  32. Odds, F.C. Synergy, antagonism, and what the chequerboard puts between them. J. Antimicrob. Chemother. 2003, 52. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  33. Kusznierewicz, B.; Piekarska, A.; Mrugalska, B.; Konieczka, P.; Namieśnik, J.; Bartoszek, A. Phenolic composition and antioxidant properties of polish blue-berried honeysuckle genotypes by HPLC-DAD-MS, HPLC postcolumn derivatization with ABTS or FC, and TLC with DPPH visualization. J. Agric. Food Chem. 2012, 60, 1755-1763. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  34. Kusznierewicz, B.; Piasek, A.; Bartoszek, A.; Namiesnik, J. Application of a commercially available derivatization instrument and commonly used reagents to HPLC on-line determination of antioxidants. J. Food Compos. Anal. 2011, 24, 1073-1080. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  35. Kusznierewicz, B.; Piasek, A.; Bartoszek, A.; Namiesnik, J. The optimisation of analytical parameters for routine profiling of antioxidants in complex mixtures by HPLC coupled post-column derivatisation. Phytochem. Anal. 2011, 22, 392-402. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  36. © 2018 by the authors. Licensee MDPI, Basel, Switzerland. This article is an open access article distributed under the terms and conditions of the Creative Commons Attribution (CC BY) license (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/). otwiera się w nowej karcie
Weryfikacja:
Politechnika Gdańska

wyświetlono 50 razy

Publikacje, które mogą cię zainteresować

Meta Tagi