Abstrakt
Distinguishing feature of the outer membrane (OM) of Gram-negative bacteria is its asymmetry due to the presence of lipopolysaccharide (LPS) in the outer leaflet of the OM and phospholipids in the inner leaflet. Recent studies have revealed the existence of regulatory controls that ensure a balanced biosynthesis of LPS and phospholipids, both of which are essential for bacterial viability. LPS provides the essential permeability barrier function and act as a major virulence determinant. In Escherichia coli, more than 100 genes are required for LPS synthesis, its assembly at inner leaflet of the inner membrane (IM), extraction from the IM, translocation to the OM, and in its structural alterations in response to various environmental and stress signals. Although LPS are highly heterogeneous, they share common structural elements defining their most conserved hydrophobic lipid A part to which a core polysaccharide is attached, which is further extended in smooth bacteria by O-antigen. Defects or any imbalance in LPS biosynthesis cause major cellular defects, which elicit envelope responsive signal transduction controlled by RpoE sigma factor and two-component systems (TCS). RpoE regulon members and specific TCSs, including their non-coding arm, regulate incorporation of non-stoichiometric modifications of LPS, contributing to LPS heterogeneity and impacting antibiotic resistance.
Cytowania
-
6 5
CrossRef
-
5 4
Web of Science
-
5 5
Scopus
Autorzy (2)
Cytuj jako
Pełna treść
- Wersja publikacji
- Accepted albo Published Version
- Licencja
- Copyright (Satish Raina, Gracjana Klein, International Journal of Molecular Sciences)
Słowa kluczowe
Informacje szczegółowe
- Kategoria:
- Publikacja w czasopiśmie
- Typ:
- artykuł w czasopiśmie wyróżnionym w JCR
- Opublikowano w:
-
INTERNATIONAL JOURNAL OF MOLECULAR SCIENCES
nr 20,
wydanie 2,
strony 1 - 22,
ISSN: 1661-6596 - Język:
- angielski
- Rok wydania:
- 2019
- Opis bibliograficzny:
- Klein-Raina G., Raina S.: Regulated Assembly of LPS, Its Structural Alterations and Cellular Response to LPS Defects// INTERNATIONAL JOURNAL OF MOLECULAR SCIENCES. -Vol. 20, iss. 2 (2019), s.1-22
- DOI:
- Cyfrowy identyfikator dokumentu elektronicznego (otwiera się w nowej karcie) 10.3390/ijms20020356
- Bibliografia: test
-
- Nikaido, H. Outer membrane. In Escherichia coli and Salmonella: Cellular and Molecular Biology, 2nd ed.; Neidhardt, F.C., Curtiss, R., Ingraham, J.L., Eds.; American Society for Microbiology Press: Washington, DC, USA, 1996; Volume 1, pp. 29-47.
- Anderson, M.S.; Bulawa, C.E.; Raetz, C.R.H. The biosynthesis of Gram-negative endotoxin. Formation of lipid A precursors from UDP-GlcNAc in extracts of Escherichia coli. J. Biol. Chem. 1985, 260, 15536-15541.
- Babinski, K.J.; Kanjilal, S.J.; Raetz, C.R.H. Accumulation of the lipid A precursor UDP-2,3-diacylglucosamine in an Escherichia coli mutant lacking the lpxH gene. J. Biol. Chem. 2002, 277, 25947-25956. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Raetz, C.R.H.; Whitfield, C. Lipopolysaccharide endotoxins. Annu. Rev. Biochem. 2002, 71, 635-700. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Vorachek-Warren, M.K.; Ramirez, S.; Cotter, R.J.; Raetz, C.R.H. A triple mutant of Escherichia coli lacking secondary acyl chains on lipid A. J. Biol. Chem. 2002, 277, 14194-14205. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Carty, S.M.; Sreekumar, K.R.; Raetz, C.R.H. Effect of cold shock on lipid A biosynthesis in Escherichia coli. Induction at 12 • C of an acyltransferase specific for palmitoleoyl-acyl carrier protein. J. Biol. Chem. 1999, 274, 9677-9685. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Klein, G.; Lindner, B.; Brabetz, W.; Brade, H.; Raina, S. Escherichia coli K-12 suppressor-free mutants lacking early glycosyltransferases and late acyltransferases. Minimal lipopolysaccharide structure and induction of envelope stress response. J. Biol. Chem. 2009, 284, 15369-15389. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Holst, O. The structures of core regions from enterobacterial lipopolysaccharides-An update. FEMS Microbiol. Lett. 2007, 271, 3-11. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Klein, G.; Kobylak, N.; Lindner, B.; Stupak, A.; Raina, S. Assembly of lipopolysaccharide in Escherichia coli requires the essential LapB heat shock protein. J. Biol. Chem. 2014, 289, 14829-14853. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Klein, G.; Raina, S. Small regulatory bacterial RNAs regulating the envelope stress response. Biochem. Soc. Trans. 2017, 45, 417-425. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Klein, G.; Stupak, A.; Biernacka, D.; Wojtkiewicz, P.; Lindner, B.; Raina, S. Multiple transcriptional factors regulate transcription of the rpoE gene in Escherichia coli under different growth conditions and when the lipopolysaccharide biosynthesis is defective. J. Biol. Chem. 2016, 291, 22999-23019. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Bailey, M.J.; Hughes, C.; Koronakis, V. RfaH and the ops element, components of a novel system controlling bacterial transcription elongation. Mol. Microbiol. 1997, 26, 845-851. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Klein, G.; Raina, S. Regulated control of the assembly and diversity of LPS by noncoding sRNAs. Biomed. Res. Int. 2015, 2015, 153561. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Dartigalongue, C.; Missiakas, D.; Raina, S. Characterization of the Escherichia coli σ E regulon. J. Biol. Chem. 2001, 276, 20866-20875. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Henry, R.; Vithanage, N.; Harrison, P.; Seemann, T.; Coutts, S.; Moffatt, J.H.; Nation, R.L.; Li, J.; Harper, M.; Adler, B.; et al. Colistin-resistant, lipopolysaccharide-deficient Acinetobacter baumannii responds to lipopolysaccharide loss through increased expression of genes involved in the synthesis and transport of lipoproteins, phospholipids, and poly-β-1,6-N-acetylglucosamine. Antimicrob. Agents Chemother. 2012, 56, 59-69. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Steeghs, L.; den Hartog, R.; den Boer, A.; Zomer, B.; Roholl, P.; van der Ley, P. Meningitis bacterium is viable without endotoxin. Nature 1998, 392, 449-450. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Missiakas, D.; Betton, J.M.; Raina, S. New components of protein folding in extracytoplasmic compartments of Escherichia coli SurA, FkpA and Skp/OmpH. Mol. Microbiol. 1996, 21, 871-884. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Crhanova, M.; Malcova, M.; Mazgajova, M.; Karasova, D.; Sebkova, A.; Fucikova, A.; Bortlicek, Z.; Pilousova, L.; Kyrova, K.; Dekanova, M.; et al. LPS structure influences protein secretion in Salmonella enterica. Vet. Microbiol. 2011, 152, 131-137. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Ebbensgaard, A.; Mordhorst, H.; Aarestrup, F.M.; Hansen, E.B. The role of outer membrane proteins and lipopolysaccharides for the sensitivity of Escherichia coli to antimicrobial peptides. Front. Microbiol. 2018. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Vivijs, B.; Aertsen, A.; Michiels, C.W. Identification of genes required for growth of Escherichia coli MG1655 at moderately low pH. Front. Microbiol. 2016, 7, 1672. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Wang, Z.; Wang, J.; Ren, G.; Li, Y.; Wang, X. Deletion of the genes waaC, waaF, or waaG in Escherichia coli W3110 disables the flagella biosynthesis. J. Basic Microbiol. 2016, 56, 1021-1035. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Schwalm, J.; Mahoney, T.F.; Soltes, G.R.; Silhavy, T.J. Role for Skp in LptD assembly in Escherichia coli. J. Bacteriol. 2013, 195, 3734-3742. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Murata, M.; Fujimoto, H.; Nishimura, K.; Charoensuk, K.; Nagamitsu, H.; Raina, S.; Kosaka, T.; Oshima, T.; Ogasawara, N.; Yamada, M. Molecular strategy for survival at a critical high temperature in Escherichia coli. PLoS ONE 2011, 6, e20063. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Yethon, J.A.; Heinrichs, D.E.; Monteiro, M.A.; Perry, M.B.; Whitfield, C. Involvement of waaY, waaQ, and waaP in the modification of Escherichia coli lipopolysaccharide and their role in the formation of a stable outer membrane. J. Biol. Chem. 1998, 273, 26310-26316. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Reynolds, C.M.; Raetz, C.R.H. Replacement of lipopolysaccharide with free lipid A molecules in Escherichia coli mutants lacking all core sugars. Biochemistry 2009, 48, 9627-9640. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Urban, J.H.; Vogel, J. Two seemingly homologous noncoding RNAs act hierarchically to activate glmS mRNA translation. PLoS Biol. 2008, 6, e64. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Göpel, Y.; Papenfort, K.; Reichenbach, B.; Vogel, J.; Görke, B. Targeted decay of a regulatory small RNA by an adaptor protein for RNase E and counteraction by an anti-adaptor RNA. Genes Dev. 2013, 27, 552-564. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Reichenbach, B.; Göpel, Y.; Görke, B. Dual control by perfectly overlapping σ 54 -and σ 70 -promoters adjusts small RNA GlmY expression to different environmental signals. Mol. Microbiol. 2009, 74, 1054-1070. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Ogura, T.; Inoue, K.; Tatsuta, T.; Suzaki, T.; Karata, K.; Young, K.; Su, L.H.; Fierke, C.A.; Jackman, J.E.; Raetz, C.R.H.; et al. Balanced biosynthesis of major membrane components through regulated degradation of the committed enzyme of lipid A biosynthesis by the protease FtsH (HflB) in Escherichia coli. Mol. Microbiol. 1999, 31, 833-844. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Führer, F.; Langklotz, S.; Narberhaus, F. The C-terminal end of LpxC is required for degradation by the FtsH protease. Mol. Microbiol. 2006, 59, 1025-1036. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Mahalakshmi, S.; Sunayana, M.R.; Saisree, L.; Reddy, M. yciM is an essential gene required for regulation of lipopolysaccharide synthesis in Escherichia coli. Mol. Microbiol. 2014, 91, 145-157. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Zeng, D.; Zhao, J.; Chung, H.S.; Guan, Z.; Raetz, C.R.H.; Zhou, P. Mutants resistant to LpxC inhibitors by rebalancing cellular homeostasis. J. Biol. Chem. 2013, 288, 5475-5486. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Guo, M.S.; Updegrove, T.B.; Gogol, E.B.; Shabalina, S.A.; Gross, C.A.; Storz, G. MicL, a new σ E -dependent sRNA, combats envelope stress by repressing synthesis of Lpp, the major outer membrane lipoprotein. Genes Dev. 2014, 28, 1620-1634. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Metzger IV, L.E.; Raetz, C.R.H. Purification and characterization of the lipid A disaccharide synthase (LpxB) from Escherichia coli, a peripheral membrane protein. Biochemistry 2009, 48, 11559-11571. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Emiola, A.; Andrews, S.S.; Heller, C.; George, J. Crosstalk between the lipopolysaccharide and phospholipid pathways during outer membrane biogenesis in Escherichia coli. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2016, 113, 3108-3113. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Katz, C.; Ron, E.Z. Dual role of FtsH in regulating lipopolysaccharide biosynthesis in Escherichia coli. J. Bacteriol. 2008, 190, 7117-7122. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Prince, C.; Jia, Z. An unexpected duo: Rubredoxin binds nine TPR motifs to form LapB, an essential regulator of lipopolysaccharide synthesis. Structure 2015, 23, 1500-1506. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Putker, F.; Grutsch, A.; Tommassen, J.; Bos, M.P. Ght protein of Neisseria meningitidis is involved in the regulation of lipopolysaccharide biosynthesis. J. Bacteriol. 2014, 196, 780-789. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Moreau, P.L.; Loiseau, L. Characterization of acetic acid-detoxifying Escherichia coli evolved under phosphate starvation conditions. Microb. Cell Fact. 2016, 15, 42. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Sutterlin, H.A.; Shi, H.; May, K.L.; Miguel, A.; Khare, S.; Huang, K.C.; Silhavy, T.J. Disruption of lipid homeostasis in the Gram-negative cell envelope activates a novel cell death pathway. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2016, 113, E1565-E1574. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Ward, A.; Reyes, C.L.; Yu, J.; Roth, C.B.; Chang, G. Flexibility in the ABC transporter MsbA: Alternating access with a twist. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2007, 104, 19005-19010. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Mi, W.; Li, Y.; Yoon, S.H.; Ernst, R.K.; Walz, T.; Liao, M. Structural basis of MsbA-mediated lipopolysaccharide transport. Nature 2017, 549, 233-237. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Ho, H.; Miu, A.; Alexander, M.K.; Garcia, N.K.; Oh, A.; Zilberleyb, I.; Reichelt, M.; Austin, C.D.; Tam, C.; Shriver, S.; et al. Structural basis for dual-mode inhibition of the ABC transporter MsbA. Nature 2018, 557, 196-201. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Hicks, G.; Jia, Z. Structural basis for the lipopolysaccharide export activity of the bacterial lipopolysaccharide transport system. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2680. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Sperandeo, P.; Martorana, A.M.; Polissi, A. The lipopolysaccharide transport (Lpt) machinery: A nonconventional transporter for lipopolysaccharide assembly at the outer membrane of Gram-negative bacteria. J. Biol. Chem. 2017, 292, 17981-17990. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Bohl, T.E.; Aihara, H. Current progress in the structural and biochemical characterization of proteins involved in the assembly of lipopolysaccharide. Int. J. Microbiol. 2018, 2018, 5319146. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Okuda, S.; Sherman, D.J.; Silhavy, T.J.; Ruiz, N.; Kahne, D. Lipopolysaccharide transport and assembly at the outer membrane: The PEZ model. Nat. Rev. Microbiol. 2016, 14, 337-345. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Luo, Q.; Yang, X.; Yu, S.; Shi, H.; Wang, K.; Xiao, L.; Zhu, G.; Sun, C.; Li, T.; Li, D.; et al. Structural basis for lipopolysaccharide extraction by ABC transporter LptB 2 FG. Nat. Struct. Mol. Biol. 2017, 24, 469-474. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Sherman, D.J.; Xie, R.; Taylor, R.J.; George, A.H.; Okuda, S.; Foster, P.J.; Needleman, D.J.; Kahne, D. Lipopolysaccharide is transported to the cell surface by a membrane-to-membrane protein bridge. Science 2018, 359, 798-801. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Qiao, S.; Luo, Q.; Zhao, Y.; Zhang, X.C.; Huang, Y. Structural basis for lipopolysaccharide insertion in the bacterial outer membrane. Nature 2014, 511, 108-111. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Dong, H.; Xiang, Q.; Gu, Y.; Wang, Z.; Paterson, N.G.; Stansfeld, P.J.; He, C.; Zhang, Y.; Wang, W.; Dong, C. Structural basis for outer membrane lipopolysaccharide insertion. Nature 2014, 511, 52-56. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Missiakas, D.; Raina, S. Protein folding in the bacterial periplasm. J. Bacteriol. 1997, 179, 2465-2471. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Chng, S.S.; Xue, M.; Garner, R.A.; Kadokura, H.; Boyd, D.; Beckwith, J.; Kahne, D. Disulfide rearrangement triggered by translocon assembly controls lipopolysaccharide export. Science 2012, 337, 1665-1668. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Narita, S.; Masui, C.; Suzuki, T.; Dohmae, N.; Akiyama, Y. Protease homolog BepA (YfgC) promotes assembly and degradation of β-barrel membrane proteins in Escherichia coli. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2013, 110, E3612-E3621. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Klein, G.; Müller-Loennies, S.; Lindner, B.; Kobylak, N.; Brade, H.; Raina, S. Molecular and structural basis of inner core lipopolysaccharide alterations in Escherichia coli: Incorporation of glucuronic acid and phosphoethanolamine in the heptose region. J. Biol. Chem. 2013, 288, 8111-8127. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Szczesny, M.; Beloin, C.; Ghigo, J.M. Increased osmolarity in biofilm triggers RcsB-dependent lipid A palmitoylation in Escherichia coli. mBio 2018, 9, e01415-e01418. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Raetz, C.R.; Reynolds, C.M.; Trent, M.S.; Bishop, R.E. Lipid A modification systems in Gram-negative bacteria. Annu. Rev. Biochem. 2007, 76, 295-329. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Rubin, E.J.; Herrera, C.M.; Crofts, A.A.; Trent, M.S. PmrD is required for modifications to Escherichia coli endotoxin that promote antimicrobial resistance. Antimicrob. Agents Chemother. 2015, 59, 2051-2061. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Herrera, C.M.; Hankins, J.V.; Trent, M.S. Activation of PmrA inhibits LpxT-dependent phosphorylation of lipid A promoting resistance to antimicrobial peptides. Mol. Microbiol. 2010, 76, 1444-1460. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Kato, A.; Chen, H.D.; Latifi, T.; Groisman, E.A. Reciprocal control between a bacterium's regulatory system and the modification status of its lipopolysaccharide. Mol. Cell 2012, 47, 897-908. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Hong, X.; Chen, H.D.; Groisman, E.A. Gene expression kinetics governs stimulus-specific decoration of the Salmonella outer membrane. Sci. Signal. 2018, 11, eaar7921. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Klein, G.; Lindner, B.; Brade, H.; Raina, S. Molecular basis of lipopolysaccharide heterogeneity in Escherichia coli: Envelope stress-responsive regulators control the incorporation of glycoforms with a third 3-deoxy-α-d-manno-oct-2-ulosonic acid and rhamnose. J. Biol. Chem. 2011, 286, 42787-42807. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Coornaert, A.; Lu, A.; Mandin, P.; Springer, M.; Gottesman, S.; Guillier, M. MicA sRNA links the PhoP regulon to cell envelope stress. Mol. Microbiol. 2010, 76, 467-479. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Gogol, E.B.; Rhodius, V.A.; Papenfort, K.; Vogel, J.; Gross, C.A. Small RNAs endow a transcriptional activator with essential repressor functions for single-tier control of a global stress regulon. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2012, 108, 12875-12880. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Coornaert, A.; Chiaruttini, C.; Springer, M.; Guillier, M. Post-transcriptional control of the Escherichia coli PhoQ-PhoP two-component system by multiple sRNAs involves a novel pairing region of GcvB. PLoS Genet. 2013, 9, e1003156. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Bishop, R.E.; Gibbons, H.S.; Guina, T.; Trent, M.S.; Miller, S.I.; Raetz, C.R.H. Transfer of palmitate from phospholipids to lipid A in outer membranes of Gram-negative bacteria. EMBO J. 2000, 19, 5071-5080. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Trent, M.S.; Pabich, W.; Raetz, C.R.H.; Miller, S.I. A PhoP/PhoQ-induced lipase (PagL) that catalyzes 3-O-deacylation of lipid A precursors in membranes of Salmonella typhimurium. J. Biol. Chem. 2001, 276, 9083-9092. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Han, K.; Tjaden, B.; Lory, S. GRIL-seq provides a method for identifying direct targets of bacterial small regulatory RNA by in vivo proximity ligation. Nat. Microbiol. 2016, 2, 16239. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Kawano, M.; Manabe, T.; Kawasaki, K. Salmonella enterica serovar Typhimurium lipopolysaccharide deacylation enhances its intracellular growth within macrophages. FEBS Lett. 2010, 584, 207-212. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Reynolds, C.M.; Ribeiro, A.A.; McGrath, S.C.; Cotter, R.J.; Raetz, C.R.H.; Trent, M.S. An outer membrane enzyme encoded by Salmonella typhimurium lpxR that removes the 3 -acyloxyacyl moiety of lipid A. J. Biol. Chem. 2006, 281, 21974-21987. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Corcoran, C.P.; Podkaminski, D.; Papenfort, K.; Urban, J.H.; Hinton, J.C.D.; Vogel, J. Superfolder GFP reporters validate diverse new mRNA targets of the classic porin regulator, MicF RNA. Mol. Microbiol. 2012, 84, 428-445. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Moon, K.; Six, D.A.; Lee, H.J.; Lee, C.R.; Raetz, C.R.H.; Gottesman, S. Complex transcriptional and post-transcriptional regulation of an enzyme for lipopolysaccharide modification. Mol. Microbiol. 2013, 89, 52-64. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Moon, K.; Gottesman, S. A PhoQ/P-regulated small RNA regulates sensitivity of Escherichia coli to antimicrobial peptides. Mol. Microbiol. 2009, 74, 1314-1330. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Müller-Loennies, S.; Holst, O.; Lindner, B.; Brade, H. Isolation and structural analysis of phosphorylated oligosaccharides obtained from Escherichia coli J-5 lipopolysaccharides. Eur. J. Biochem. 1999, 260, 235-249. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Fresno, S.; Jiménez, N.; Canals, R.; Merino, S.; Corsaro, M.M.; Lanzetta, R.; Parrilli, M.; Pieretti, G.; Regué, M.; Tomás, J.M. A second galacturonic acid transferase is required for core lipopolysaccharide biosynthesis and complete capsule association with the cell surface in Klebsiella pneumoniae. J. Bacteriol. 2007, 189, 1128-1137. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Müller-Loennies, S.; Lindner, B.; Brade, H. Structural analysis of oligosaccharides from lipopolysaccharide (LPS) of Escherichia coli K12 strain W3100 reveals a link between inner and outer core LPS biosynthesis. J. Biol. Chem. 2003, 278, 34090-34101. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Reynolds, C.M.; Kalb, S.R.; Cotter, R.J.; Raetz, C.R.H. A phosphoethanolamine transferase specific for the outer 3-deoxy-d-manno-octulosonic acid residue of Escherichia coli lipopolysaccharide. Identification of the eptB gene and Ca 2+ hypersensitivity of an eptB deletion mutant. J. Biol. Chem. 2005, 280, 21202-21211. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Amar, A.; Pezzoni, M.; Pizarro, R.A.; Costa, C.S. New envelope stress factors involved in σ E activation and conditional lethality of rpoE mutations in Salmonella enterica. Microbiology 2018, 164, 1293-1307. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Burmann, B.M.; Knauer, S.H.; Sevostyanova, A.; Schweimer, K.; Mooney, R.A.; Landick, R.; Artsimovitch, I.; Rösch, P. An α helix to β barrel domain switch transforms the transcription factor RfaH into a translation factor. Cell 2012, 150, 291-303. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Majdalani, N.; Heck, M.; Stout, V.; Gottesman, S. Role of RcsF in signaling to the Rcs phosphorelay pathway in Escherichia coli. J. Bacteriol. 2005, 187, 6770-6778. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Raina, S.; Missiakas, D.; Georgopoulos, C. The rpoE gene encoding the σ E (σ 24 ) heat shock sigma factor of Escherichia coli. EMBO J. 1995, 14, 1043-1055. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Rouvière, P.E.; De Las Peñas, A.; Mecsas, J.; Lu, C.Z.; Rudd, K.E.; Gross, C.A. rpoE, the gene encoding the second heat-shock sigma factor, σ E , in Escherichia coli. EMBO J. 1995, 14, 1032-1042. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Missiakas, D.; Mayer, M.P.; Lemaire, M.; Georgopoulos, C.; Raina, S. Modulation of the Escherichia coli σ E (RpoE) heat-shock transcription-factor activity by the RseA, RseB and RseC proteins. Mol. Microbiol. 1997, 24, 355-371. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Lima, S.; Guo, M.S.; Chaba, R.; Gross, C.A.; Sauer, R.T. Dual molecular signals mediate the bacterial response to outer-membrane stress. Science 2013, 340, 837-841. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Sperandeo, P.; Lau, F.K.; Carpentieri, A.; De Castro, C.; Molinaro, A.; Dehò, G.; Silhavy, T.J.; Polissi, A. Functional analysis of the protein machinery required for transport of lipopolysaccharide to the outer membrane of Escherichia coli. J. Bacteriol. 2008, 190, 4460-4469. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Konovalova, A.; Mitchell, A.M.; Silhavy, T.J. A lipoprotein/β-barrel complex monitors lipopolysaccharide integrity transducing information across the outer membrane. eLife 2016, 5, e15276. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Noor, R.; Murata, M.; Nagamitsu, H.; Klein, G.; Raina, S.; Yamada, M. Dissection of σ E -dependent cell lysis in Escherichia coli: Roles of RpoE regulators RseA, RseB and periplasmic folding catalysts PpiD. Genes Cells 2009, 14, 885-899. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- © 2019 by the authors. Licensee MDPI, Basel, Switzerland. This article is an open access article distributed under the terms and conditions of the Creative Commons Attribution (CC BY) license (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/). otwiera się w nowej karcie
- Źródła finansowania:
- Weryfikacja:
- Politechnika Gdańska
wyświetlono 100 razy