ANTYGENY REKOMBINANTOWE W DIAGNOSTYCE SEROLOGICZNEJ BORELIOZY - Publikacja - MOST Wiedzy

Twoje konto

zaloguj

Wyszukiwarka

ANTYGENY REKOMBINANTOWE W DIAGNOSTYCE SEROLOGICZNEJ BORELIOZY

Abstrakt

Borelioza jest najczęstszą chorobą odkleszczową dotykającą mieszkańców półkuli północnej. Chorobę tę wywołują bakterie zakwalifikowane do grupy Borrelia burgdorferi sensu lato. Współcześnie podstawą diagnostyki laboratoryjnej boreliozy jest dwustopniowe badanie serologiczne. Pierwszym etapem jest test immunoenzymatyczny (ELISA), jeżeli wynik badania jest dodatni lub wątpliwy jako test potwierdzający stosuje się technikę Western blot. W obu metodach jako główne źródło antygenów wykorzystuje się całkowite lizaty komórkowe B. burgdorferi s.l. Jednak ogromna różnorodność gatunków w obrębie B. burgdorferi s.l. oraz niski stopień zakonserwowania sekwencji ich białek sprawia, że wykorzystanie lizatów komórkowych jednego z genogatunków nie jest wystarczające do prawidłowego rozpoznania boreliozy. Liczne doniesienia literaturowe wykazują, że wykorzystanie antygenów rekombinantowych lub chimerycznych B. burgdorferi s.l. może być potencjalnym rozwiązaniem problemów występujących w immunodiagnostyce boreliozy. Jednak, aby testy diagnostyczne oparte na białkach rekombinantowych miały jak największą skuteczność należy wykorzystać w nich starannie wyselekcjonowane antygeny lub ich fragmenty. Dzięki takiemu podejściu można opracować test, którego czułość pozostanie niezależna od genogatunku B. burgdorferi s.l., który wywołał chorobę. Dodatkowo wykorzystanie jedynie fragmentów białek może zdecydowanie ograniczyć częstość występowania reakcji krzyżowych.

Cytowania

  • 0

    CrossRef

  • 0

    Web of Science

  • 0

    Scopus

Autorzy (2)

Cytuj jako

Pełna treść

pobierz publikację
pobrano 445 razy
Wersja publikacji
Accepted albo Published Version
Licencja
Creative Commons: CC-BY-NC-ND otwiera się w nowej karcie

Słowa kluczowe

Informacje szczegółowe

Kategoria:
Publikacja w czasopiśmie
Typ:
artykuły w czasopismach
Opublikowano w:
Postępy Mikrobiologii nr 58, strony 399 - 413,
ISSN: 0079-4252
Język:
polski
Rok wydania:
2019
Opis bibliograficzny:
Grąźlewska W., Holec-Gąsior L.: ANTYGENY REKOMBINANTOWE W DIAGNOSTYCE SEROLOGICZNEJ BORELIOZY// Postępy Mikrobiologii -Vol. 58,iss. 4 (2019), s.399-413
DOI:
Cyfrowy identyfikator dokumentu elektronicznego (otwiera się w nowej karcie) 10.21307/pm-2019.58.4.399
Bibliografia: test
  1. Aguero-Rosenfeld M.E., Nowakowski J., Bittker S., Cooper D., Nadelman R.B., Wormser G.P.: Evolution of the serologic response to Borrelia burgdorferi in treated patients with cul- ture-confirmed erythema migrans. Microbiology, 34, 1-9 (1996) otwiera się w nowej karcie
  2. Aguero-Rosenfeld M.E., Wang G., Schwartz I., Wormser G.P.: Diagnosis of Lyme borreliosis. Clin. Microbiol. Rev. 18, 484-509 (2005) otwiera się w nowej karcie
  3. Arnaboldi P.M., Seedarnee R., Sambir M., Callister S.M., Imparato J.A., Dattwyler R.J.: Outer surface protein C peptide derived from Borrelia burgdorferi sensu stricto as a target for serodiagnosis of early Lyme disease. Clin. Vaccine Immunol. 20, 474-481 (2013) otwiera się w nowej karcie
  4. Bacon R.M., Biggerstaff B.J., Schriefer M.E., Gilmore R.D., Philipp M.T., Steere A.C.: Serodiagnosis of Lyme disease by kinetic enzyme-linked immunosorbent assay using recombi- nant VlsE1 or peptide antigens of Borrelia burgdorferi compared with 2-tiered testing using whole-cell lysates. J. Infect. Dis. 187, 1187-1199 (2003) otwiera się w nowej karcie
  5. Barbour A.G., Hayes S.F.: Biology of Borrelia species. Microbiol. Rev. 50, 381-400 (1986) otwiera się w nowej karcie
  6. Bruckbauer H.R., Preac-Mursic V., Fuchs R., Wilske B.: Cross- -reactive proteins of Borrelia burgdorferi. Eur. J. Clin. Microbiol. Infec. Dis. 11, 224-232 (1992) otwiera się w nowej karcie
  7. Burgdorfer W., Barbour A.G., Hayes S.F., Benach J.L., Grun- waldt E., Davis J.P.: Lyme disease -a tick-borne spirochetosis? Science, 216, 1317-1319 (1982) otwiera się w nowej karcie
  8. Carrasco S.E., Troxell B., Yang Y., Brandt S.L., Li H., Sandu- sky G.E., Yang X.F.: Outer surface protein OspC is an antiphago- cytic factor that protects Borrelia burgdorferi from phagocytosis by macrophages. Infect. Immun. 83, 4848-4860 (2015) otwiera się w nowej karcie
  9. Casjens S.R., Palmer N., Van Vugt R., Huang W., Stevenson B., Rosa P., Haft D.:A bacterial genome in flux: the twelve linear and nine circular extrachromosomal DNAs in an infectious isolate of the Lyme disease spirochete Borrelia burgdorferi. Mol. Microbiol. 35, 490-516 (2000) otwiera się w nowej karcie
  10. Casjens S.R., Gilcrease E.B., Vujadinovic M., Mongodin E.F., Luft B.J., Schutzer S.E., Qiu W.G.: Plasmid diversity and phylo- genetic consistency in the Lyme disease agent Borrelia burgdor- feri. BMC Genom. 18, 1-18 (2017) otwiera się w nowej karcie
  11. Centers for Disease Control and Prevention. Recommendations for test performance and interpretation from the Second Natio- nal Conference on Serological Diagnosis of Lyme Disease. Morb. Mortal. Wkly. Re. 44, 590-591 (1995) otwiera się w nowej karcie
  12. van Dam A.P., Kuiper H., Vos K., Widjojokusumo A., de Jongh B.M., Spanjaard L., Dankert J.: Different genospecies of Borrelia burgdorferi are associated with distinct clinical manifestations of Lyme borreliosis. Clin. Infect. Dis. 17, 708-717 (1993) otwiera się w nowej karcie
  13. Dessau R.B., Strle F. i wsp.: To test or not to test? Laboratory support for the diagnosis of Lyme borreliosis. Clin. Microbiol. Infect. 24, 118-124 (2018) otwiera się w nowej karcie
  14. Dressler F., Whalen J.A., Reinhardt B.N., Steere A.C.: Western blotting in the serodiagnosis of Lyme disease. J. Infect. Dis. 167, 392-400 (1993) otwiera się w nowej karcie
  15. Eiffert H.F., Hanefeld R., Thomssen H., Christen J.: Reinfection in Lyme borreliosis. Infection, 24, 437-439 (1996) otwiera się w nowej karcie
  16. Engstrom S.M., Shoop E., Johnson R.C.: Immunoblot interpre- tation criteria for serodiagnosis of early Lyme disease. J. Clin. Microbiol. 33, 419-427 (1995) otwiera się w nowej karcie
  17. Fingerle V., Schulte-Spechtel U.C., Leonhard S., Hofmann H., Weber K., Pfister K., Strle F., Wilske B.: Epidemiological aspects and molecular characterization of Borrelia burgdorferi s.l. from southern Germany with special respect to the new species Borre- lia spielmanii sp. nov. Int. J. Med. Microbiol. 298, 279-290 (2008) otwiera się w nowej karcie
  18. Fischer J.R., Parveen N., Magoun L., Leong J.M.: Decorin-bin- ding proteins A and B confer distinct mammalian cell type- -specific attachment by Borrelia burgdorferi, the Lyme disease spirochete. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 66, 567-589 (2003) otwiera się w nowej karcie
  19. Fraser C.M., Casjens S., Huang W.M., Sutton G.G., Clayton R., Lathigra R.: Genomic sequence of a Lyme disease Spirochaete, Borrelia burgdorferi. Nature, 390, 580-586 (1997) otwiera się w nowej karcie
  20. Fung B.P., McHugh J.M., Leong A., Steere A.C.: Humoral immune response to outer surface protein C of Borrelia burg- dorferi in Lyme disease: role of the immunoglobulin M response in the serodiagnosis of early infection. Infect. Immun. 62, 3213- 3221 (1994) otwiera się w nowej karcie
  21. Gąsiorowski J., Witecka-Knysz E., Knysz B., Gerber H., Gładysz A.: Diagnostyka boreliozy. Med. Pr. 58, 438-447 (2007) otwiera się w nowej karcie
  22. Ge Y., Li C., Corum L., Slaughter C.A., Charon N.W.: Structure and expression of the flaA periplasmic flagellar protein of Bor- relia burgdorferi. J. Bacteriol. 180, 2418-2425 (1998) otwiera się w nowej karcie
  23. Gerber M.A., Shapiro E.D., Bell G.L., Sampieri A., Padula S.J.: Recombinant outer surface protein C ELISA for the diagnosis of early Lyme disease. J. Infect. Dis. 171, 724-727 (1995) otwiera się w nowej karcie
  24. Gilmore Jr. R.D., Mbow M.L., Stevenson B.: Analysis of Borrelia burgdorferi gene expression during life cycle phases of the tick vector Ixodes scapularis. Microb. Infect. 3, 799-808 (2001) 412 otwiera się w nowej karcie
  25. WERONIKA GRĄŹLEWSKA, LUCYNA HOLEC-GĄSIOR
  26. Glöckner G.: Comparative analysis of the Borrelia garinii genome. Nucleic Acids Res. 32, 6038-6046 (2004) otwiera się w nowej karcie
  27. Goddard J:. Not all erythema migrans lesions are Lyme dise- ase. Am. J. Med. 130, 231-233 (2017) otwiera się w nowej karcie
  28. Goettner G., Schulte-Spechtel U., Hillermann R., Liegl G., Wil- ske B., Fingerle V.: Improvement of Lyme borreliosis serodia- gnosis by a newly developed recombinant immunoglobulin G (IgG) and IgM line immunoblot assay and addition of VlsE and DbpA homologues. J. Clin. Microbiol. 43, 3602-3609 (2005) otwiera się w nowej karcie
  29. Gomes-Solecki M.J., Dunn J.J., Luft B.J., Castillo J., Dykhuizen D.E., Yang X.: Recombinant chimeric Borrelia proteins for dia- gnosis of Lyme disease. J. Clin. Microbiol. 38, 2530-2535 (2000) otwiera się w nowej karcie
  30. Hagman K.E., Lahdenne P., Popova T.G., Porcella S.F., Akins D.R., Radolf J.D., Norgard M.V.: Decorin-binding protein of Borrelia burgdorferi is encoded within a two-gene operon and is protective in the murine model of Lyme borreliosis. Infect. Immun. 66, 2674-2683 (1998) otwiera się w nowej karcie
  31. Hansen K., Hindersson P., Pedersen S.P.: Measurement of anti- bodies to the Borrelia burgdorferi flagellum improves serodia- gnosis in Lyme disease. J. Clin. Microbiol. 26, 338-346 (1988) otwiera się w nowej karcie
  32. Hansen K., Asbrink E.: Serodiagnosis of erythema migrans and acrodermatitis chronica atrophicans by the Borrelia burgdorferi immunodominant 60-kilodalton antigen common to. Infect. Immun. 27, 545-551 (1989) otwiera się w nowej karcie
  33. Heikkilä T., Seppälä I., Saxen H., Panelius J., Yrjänäinem H., Lahdenne P.: Species-specific serodiagnosis of Lyme arthritis and neuroborreliosis due to Borrelia burgdorferi sensu stricto, B. afzelii, and B. garinii by using decorin binding protein. J. Clin. Micobiol. 40, 453-460 (2002) otwiera się w nowej karcie
  34. Hofmann H., Fingerl V., Hunfeld K.P., Huppert H.I., Krause A., Rauer S., Ruf B.: Cutaneous Lyme borreliosis: guideline of the German Dermatology Society. Ger. Med. Sci. 15, 1-31 (2017).
  35. Howe T.R., LaQuier F.W., Barbour A.G.: Organization of genes encoding two outer membrane proteins of the Lyme disease agent Borrelia burgdorferi within a single transcriptional unit. Infect. Immun. 54, 207-212 (1986) otwiera się w nowej karcie
  36. Johnson B.J., Robbins K.E., Bailey R.E., Cao B.L., Sviat S.L., Craven R.B., Dennis D.T.: Serodiagnosis of Lyme disease: accu- racy of a two-step approach using a flagella-based ELISA and immunoblotting. J. Infect. Dis. 174, 346-353 (1996) otwiera się w nowej karcie
  37. Johnson R.C., Schmid G.P., Hyde F.W., Steigerwalt A.G., Bren- ner D.J.: Borrelia burgdorferi sp. nov.: etiologic agent of Lyme disease. Int. J. Syst. Bacteriol. 34, 496-497 (1984) otwiera się w nowej karcie
  38. Kalish R.A., McHugh G., Granquist J., Shea B., Ruthazer R., Steere A.C.: Persistence of immunoglobulin M or immunoglobu- lin G antibody responses to. Clin. Infect. Dis. 33, 780-785 (2001) otwiera się w nowej karcie
  39. Kenedy M.R., Lenhart T.R., Akins D.R.: The Role of Borrelia burgdorferi outer surface proteins. FEMS Immun. Med. Micro- biol. 66, 1-19 (2012) otwiera się w nowej karcie
  40. Kraiczy P.: Hide and seek: how Lyme disease spirochetes over- come complement attack. Front. Immunol. 7, 385-393 (2016) otwiera się w nowej karcie
  41. Krzyczmanik D., Sińczuk-Walczak H., Wittczak T., Cyran A., Pałczyński C., Walusiak-Skorupa J.: Borreliosis in occupational medicine practice. Med. Pr. 63, 483-492 (2012)
  42. Lawrenz M.B., Hardham J.M., Owens R.T., Nowakowski J., Steere A.C., Wormser G.P., Norris S.J.: Human antibody respon- ses to VlsE antigenic variation protein of Borrelia burgdorferi. J. Clin. Microbiol. 37, 3997-4004 (1999) otwiera się w nowej karcie
  43. Leeflang M.M.G., Sprong H. i wsp.: The diagnostic accuracy of serological tests for Lyme borreliosis in Europe: a systematic review and meta-analysis. BMC Infect. Dis. 16, 140-157 (2016) otwiera się w nowej karcie
  44. Liang F.T., Steere A.C., Marques A.R., Johnson B.J, Miller J.N., Philipp M.T.: Sensitive and specific serodiagnosis of Lyme dise- ase by enzyme-linked immunosorbent assay with a peptide based on an immunodominant conserved region of Borrelia burgdorferi VlsE. J. Clin. Microbiol. 37, 3990-3996 (1999) otwiera się w nowej karcie
  45. Liang F.T., Philipp M.T.: Epitope mapping of the immunodomi- nant invariable region of Borrelia burgdorferi VlsE in three host species. Infect. Immun. 68, 2349-2352 (2000) otwiera się w nowej karcie
  46. Lohr B., Fingerle V., Norris D.E., Hunfeld K.P.: Laboratory dia- gnosis of Lyme borreliosis: current state of the art and future perspectives. Crit. Rev. Clin. Lab. Sci. 55, 1-27 (2018) otwiera się w nowej karcie
  47. Magnarelli L.A., Fikrig E., Padula S.J., Anderson J.F., Flavell R.A.: Use of recombinant antigens of Borrelia burgdorferi in serologic tests for diagnosis of Lyme borreliosis. J. Clin. Micro- biol. 34, 237-240 (1996) otwiera się w nowej karcie
  48. Magnarelli L.A., Ijdo J.W., Padula S.J., Flavell R.A., Fikrig E.: Serologic diagnosis of Lyme borreliosis by using enzyme-lin- ked immunosorbent assays with recombinant antigens. J. Clin. Microbiol. 38, 1735-1739 (2000) otwiera się w nowej karcie
  49. Margos G., Fedorova N., Kleinjan J.E., Hartberger C., Schwan T.G., Sing A., Fingerle V.: Borrelia lanei sp. nov. extends the diversity of Borrelia species in California. Int. J. Syst. Evol. Micro- biol. 67, 3872-3876 (2017) otwiera się w nowej karcie
  50. Margos G., Hepner S., Mang C., Sing A., Liebl B., Fingerle V.: Completed genome sequences of Borrelia burgdorferi sensu stricto B31 (NRZ) and closely related patient isolates from Europe. Genome Announc. 5, e00637 (2017) otwiera się w nowej karcie
  51. Margos G., Lane R.S., Fedorova N., Koloczek J., Piesman J., Hojgaard A., Sing A., Fingerle V.: Borrelia bissettiae sp. nov. and Borrelia californiensis sp. nov. prevail in diverse enzootic transmission cycles. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 66, 1447-1452 (2016). otwiera się w nowej karcie
  52. Mathiesen M.J., Holm A., Christiansen M., Blom J., Hansen K., Østergaard S., Theisen M.: The dominant epitope of Borrelia garinii outer surface protein C recognized by sera from patients with neuroborreliosis has a surface-exposed conserved structu- ral motif. Infect. Immun. 66, 4073-4079 (1998) otwiera się w nowej karcie
  53. Matyjasek A., Zdrojewski Z.: Borelioza -najnowsze rekomenda- cje w diagnostyce i leczeniu. Forum Reumatol. 2, 58-64 (2016)
  54. Meriläinen L., Herranen A., Schwarzbach A., Gilbert L.: Mor- phological and biochemical features of Borrelia burgdorferi pleomorphic forms. Microbiology, 161, 516-527 (2015) otwiera się w nowej karcie
  55. Moniuszko-Malinowska A., Penza P., Czupryna P., Pance- wicz S., Zajkowska J.: Borrelia burgdorferi-morphological struc- ture and motility as adaptation for transmission and survival in the habitat of a tick -vertebrate setup. Prz. Epidemiol. 70, 420-427 (2016) otwiera się w nowej karcie
  56. Moore A., Nelson C., Molins C., Mead P., Schriefer M.: Current guidelines, common clinical pitfalls, and future directions for laboratory diagnosis of Lyme disease, United States. Emerging Infect. Dis. 22, 1169-1177 (2016) otwiera się w nowej karcie
  57. Norris S.J.: The vls antigenic variation systems of Lyme disease Borrelia: eluding host immunity through both random, segmen- tal gene conversion and framework heterogeneity. Microbiol. Spectr. 2, 34-41 (2014) otwiera się w nowej karcie
  58. Ojaimi C., Brooks C., Casjens S., Rosa P., Elias A., Barbour A.: Profiling of temperature-induced changes in Borrelia burg- dorferi gene expression by using whole genome arrays. Infect. Immun. 71, 1689-1705 (2003) otwiera się w nowej karcie
  59. Padula S.J., Dias F., Sampieri A., Craven R.B., Ryan R.W.: Use of recombinant OspC from Borrelia burgdorferi for serodiagnosis of early Lyme disease. J. Clin. Microbiol. 32, 1733-1738 (1994) otwiera się w nowej karcie
  60. Pancewicz S.A., Garlicki A.M., Moniuszko-Malinowska A., Zajkowska J., Kondrusik, M., Grygorczuk S., Czupryna P., Dunaj, J. Diagnosis and treatment of tick-borne diseases recom- mendations of the Polish Society of Epidemiology and Infec- tious Diseases. Przegl Epidemiol, 69, 309-316 (2015)
  61. Panelius J., Lahdenne P., Heikkilä T., Peltomaa M., Oksi J., Seppälä I.: Recombinant OspC from Borrelia burgdorferi sensu stricto B. afzelii and B. garinii in the serodiagnosis of Lyme bor- reliosis. J. Med. Microbiol. 51, 731-739 (2002) otwiera się w nowej karcie
  62. Pritt B.S, Petersen J.M. i wsp.: Borrelia mayonii sp. nov., a mem- ber of the Borrelia burgdorferi sensu lato complex, detected in patients and ticks in the upper midwestern United States. Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 66, 4878-4880 (2016) otwiera się w nowej karcie
  63. Purser E., Norris J.S.: Correlation between plasmid content and infectivity in Borrelia burgdorferi. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 97, 13865-13870 (2000) otwiera się w nowej karcie
  64. Roessler D., Hauser U., Wilske B.: Heterogeneity of BmpA (P39) among European isolates of Borrelia burgdorferi sensu lato and influence of interspecies variability on serodiagnosis. J. Clin. Microbiol. 35, 2752-2758 (1997). otwiera się w nowej karcie
  65. Rudenko N., Golovchenko M., Grubhoffer L., Oliver Jr J.H.: Updates on Borrelia burgdorferi sensu lato complex with respect to public health. Ticks Tick Borne Dis. 2, 123-128 (2011) otwiera się w nowej karcie
  66. Schwan T.G., Piesman J., Golde W.T., Dolan M.C., Rosa P.A.: Induction of an outer surface protein on Borrelia burgdorferi during tick feeding. Proc. Nat. Acad. Sci. USA, 92, 2909-2913 (1995) otwiera się w nowej karcie
  67. Schwan T.G., Piesman J.: Temporal changes in outer surface proteins A and C of the Lyme disease -associated spirochete, Borrelia burgdorferi, during the chain of infection in ticks and mice. J. Clin. Microbiol. 38, 382-388 (2000) otwiera się w nowej karcie
  68. Shapiro E.D.: Lyme disease. N. Engl. J. Med. 370, 1724-1731 (2014) otwiera się w nowej karcie
  69. Simpson W.J., Cieplak W., Schrumpf M.E., Barbour A.G., Schwan T.G.: Nucleotide sequence and analysis of the gene in Borrelia burgdorferi encoding the immunogenic P39 anti- gen. FEMS Microbiol. Lett. 119, 381-387 (1994) otwiera się w nowej karcie
  70. Stanek G., Reiter M.: The expiing Lyme Borrelia complex-clini- cal significance of genomic species? Clin. Microbiol. Infect. 17, 487-493 (2011) otwiera się w nowej karcie
  71. Stanek G., Wormser G.P., Gray J., Strle F.: Lyme borreliosis. Lan- cet, 379, 461-473 (2012) otwiera się w nowej karcie
  72. Steere A.C., Malawista S.E., Hardin J.A., Ruddy S., Askenase, P.W., Andiman W. A.: Erythema chronicum migrans and Lyme arthritis. Ann. Intern. Med. 86, 685-698 (1977) otwiera się w nowej karcie
  73. Theel E.S.: The past present and (possible) future of serologic testing for Lyme disease. J. Clin. Microbiol. 54, 1191-1196 (2016) otwiera się w nowej karcie
  74. Verma A., Brissette C.A., Bowman A., Stevenson B.: Borrelia burgdorferi BmpA is a laminin-binding protein. Infect. Immun. 77, 4940-4946 (2009) otwiera się w nowej karcie
  75. des Vignes F., Piesman J., Heffernan R., Schulze T.L., Staf- ford III K.C., Fish D.: Effect of tick removal on transmission of Borrelia burgdorferi and Ehrlichia phagocytophila by Ixodes scapularis nymphs. J. Infect. Dis. 183, 773-778 (2001) otwiera się w nowej karcie
  76. Wallich R., Moter S.E., Simon M.M., Ebnet K., Heiberger A., Kramer M.D.: The Borrelia burgdorferi flagellum-associated 41-kilodalton antigen (flagellin): molecular cloning, expression and amplification of the gene. Infect. Immun. 58, 1711-1719 (1990) otwiera się w nowej karcie
  77. Wang G., van Dam A.P., Schwartz I., Dankert J.: Molecular typing of Borrelia burgdorferi sensu lato: taxonomic, epide- miological and clinical implications. Clin. Microbiol. Rev. 12, 633-653 (1999) otwiera się w nowej karcie
  78. Wilske B., Fingerle V., Herzer P., Hofmann A., Lehnert G., Peters H., Weber K.: Recombinant immunoblot in the serodia- gnosis of Lyme borreliosis-comparison with indirect immuno- fluorescence and enzyme-linked immunosorbent assay. Med. Microbiol. Immun. 182, 255-270 (1993) otwiera się w nowej karcie
  79. Wilske B.: Epidemiology and diagnosis of Lyme borreliosis. Ann. Med. 37, 568-579 (2005) otwiera się w nowej karcie
  80. Wilske B., Fingerle V., Schulte-Spechtel U.: Microbiological and serological diagnosis of Lyme borreliosis. FEMS Immun. Med. Microbiol. 49, 13-21 (2007) otwiera się w nowej karcie
  81. Wormser G.P., Schriefer M., Aguero-Rosenfeld M.E., Levin A., Steere A.C., Nadelman R.B., Dumler J.S.: Single-tier testing with the C6 peptide ELISA kit compared with two-tier testing for Lyme disease. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 75, 9-15 (2013) otwiera się w nowej karcie
  82. Yang X., Izadi H., Coleman A.S., Wang P., Ma Y., Fikrig E., Anguita J., Pal U.: Borrelia burgdorferi lipoprotein BmpA activa- tes pro-inflammatory responses in human synovial cells through a protein moiety. Microbes Infect. 10, 1300-1308 (2008) otwiera się w nowej karcie
  83. Zhang J.R., Hardham J.M., Barbour A.G., Norris S.J.: Anti- genic variation in Lyme disease borreliae by promiscuous recombination of VMP-like sequence cassettes. Cell, 89, 275- 285 (1997) otwiera się w nowej karcie
Weryfikacja:
Politechnika Gdańska

wyświetlono 273 razy

Publikacje, które mogą cię zainteresować

PRZYDATNOŚĆ DIAGNOSTYCZNA REAKCJI PCR W ROZPOZNAWANIU BORELIOZY

2020

Novel monovalent and multivalent recombinant proteins of Borrelia burgdorferi sensu lato with potential diagnostic value – construction and biotechnological production

2024

Toxoplasma gondii: Chimeric Dr fimbriae as a recombinant vaccine against toxoplasmosis

2008

Usefulness of Toxoplasma gondii recombinant antigens (GRA1, GRA7 and SAG1) in an immunoglobulin G avidity test for the serodiagnosis of toxoplasmosis

2007
Meta Tagi