Techniki chromatografii cieczowej, stosowane w analityce technicznej procesów hydrolizy biomasy ligno-celulozowej - BMLC. Przegląd - Publikacja - MOST Wiedzy

Wyszukiwarka

Techniki chromatografii cieczowej, stosowane w analityce technicznej procesów hydrolizy biomasy ligno-celulozowej - BMLC. Przegląd

Abstrakt

Obróbka wstępna biomasy ligno-celulozowej (BMLC) realizowana z zastosowaniem kwasów, zasad oraz enzymów jest ważnym etapem przetwarzania surowca przed procesem fermentacji. Podczas hydrolizy złożone struktury biopolimerów: celulozy, hemicelulozy i ligniny rozpadają się do związków o małej masie cząsteczkowej (cukry, oligosacharydy, związki fenolowe). Jednak nie jest to proces łatwy i wymaga doboru odpowiednich warunków procesu, między innymi rodzaj i stężenie katalizatora, temperatura procesu, czas, ciśnieni). Do określenia składu produktów głównych i ubocznych oraz wydajności produktów w zależności od warunków prowadzonego procesu konieczne jest wykorzystanie pewnych i sprawdzonych metod analitycznych. Odpowiednio dobrana analityka techniczna pozwala również monitorować przebieg procesu hydrolizy w reaktorze. W niniejszej pracy przedstawiono przegląd metod analitycznych wykorzystujących techniki chromatografii cieczowej do analizy technicznej produktów hydrolizy.

Cytuj jako

Pełna treść

pobierz publikację
pobrano 2110 razy
Wersja publikacji
Accepted albo Published Version
Licencja
Creative Commons: CC-BY-SA otwiera się w nowej karcie

Słowa kluczowe

Informacje szczegółowe

Kategoria:
Publikacja w czasopiśmie
Typ:
artykuły w czasopismach recenzowanych i innych wydawnictwach ciągłych
Opublikowano w:
Camera Separatoria nr 9, strony 92 - 105,
ISSN: 2083-6392
Język:
polski
Rok wydania:
2017
Opis bibliograficzny:
Glinka M., Łukajtis R., Nowak P., Kamiński M.: Techniki chromatografii cieczowej, stosowane w analityce technicznej procesów hydrolizy biomasy ligno-celulozowej - BMLC. Przegląd// Camera Separatoria. -Vol. 9., nr. 2 (2017), s.92-105
Bibliografia: test
  1. Y. Sun, J. Cheng, Hydrolysis of lignocellulosic materials for ethanol production: a review, Bioresource Technology, 83 (2002) 1-11. doi: 10.1016/S0960-8524(01)00212-7. otwiera się w nowej karcie
  2. P. Kumar, DM. Barrett, MJ. Delwiche, P. Stroeve, Methods for pre-treatment of lignocellulosic Biomass for efficient hydrolysis and biofuel production, Industrial & Engineering Chemistry Research, 48 (2009) 3713-3729. doi: 10.1021/ie801542g. otwiera się w nowej karcie
  3. J. Wang, W. Wan, Influence of Ni2+ concentration on biohydrogen production, Bioresource Technology, 99 (2008) 8864-8. doi: 10.1016/j.biortech.2008.04.052. otwiera się w nowej karcie
  4. N. Azbar, Ft. Çetinkaya Dokgöz, T. Keskin, KS. Korkomaz, HM. Syed, Continuous fermentative hydrogen production from cheese whey wastewater under thermophilic anaerobic conditions, International Journal of Hydrogen Energy, 34 (2009) 7441-7447. doi: 10.1016/j.ijhydene.2009.04.032. otwiera się w nowej karcie
  5. R. Kothari, DP. Singh, VV. Tyagi, SK. Tyagi, Fermentative hydrogen production -An alternative clean energy source, Renewable and Sustainable Energy Reviews, 16 (2012) 2337-2346. doi: 10.1016/j.rser.2012.01.002. otwiera się w nowej karcie
  6. JY. Zhu, X. Pan, RS. Zalesny, Pretreatment of woody biomass for biofuel production: energy efficiency, technologies, and recalcitrance, Applied Microbiology and Biotechnology, 87 ( 2010), 847-857. doi: 10.1007/s00253-010-2654-8. otwiera się w nowej karcie
  7. J. Zhu, Y. Li, X. Wu, C. Miller, P. Chen, R. Ruan, Swine manure fermentation for hydrogen production, Bioresource Technology, 100 (2009) 5472-5477. doi: 10.1016/j.biortech.2008.11.045. otwiera się w nowej karcie
  8. K. Karimi, G. Emtiazi, MJ. Taherzadeh, Ethanol production from dilute-acid pretreated rice straw by simultaneous saccharification and fermentation with Mucor indicus, Rhizopus oryzae, and Saccharomyces cerevisiae, Enzyme and Microbial Technology, 40 (2006) 138-144. doi: 10.1016/j.enzmictec.2005.10.046. otwiera się w nowej karcie
  9. R. Lee, PJ. Weimer, WH. Zyl, Microbial Cellulose Utilization: Fundamentals and Biotechnology, Microbiology and Molecular Biology Reviews, 66 (2002) 506-577.
  10. DF. Correa, HL. Beyer, HP. Possingham, SR. Hall, PM. Schenk, Biodiversity impacts of bioenergy production: Microalgae vs. first generation biofuels, Renewable and Sustainable Energy Reviews, 74 (2017) 1131-1146. doi: doi.org/10.1016/j.rser.2017.02.068. otwiera się w nowej karcie
  11. F. Saladini, N. Patrizi, FM. Pulselli, N. Marchettini, S. Bastianoni, Guidelines for emergy evaluation of first, second and third generation biofuels, Renewable Sustainable Energy Reviews, 66 (2016) 221-227. doi: 10.1016/j.rser.2016.07.073. otwiera się w nowej karcie
  12. DP. Singh, RK. Trvedi, Acid and alkaline pretreatment of lignocellulosic biomass to produce ethanol as biofuel, International Journal of ChemTech Research, 5 (2013) 727-734.
  13. F. Carvalheiro, LC. Duarte, FM. Girio, Hemicellulose biorefineries: A review on biomass pretreatments, Journal of Scientific & Industrial Research (India), 67 (2008) 849-864. otwiera się w nowej karcie
  14. MJ. Taherzadeh, K. Karimi, Pretreatment of lignocellulosic wastes to improve ethanol and biogas production: A review, International Journal of Molecular Sciences, 9 (2008) 1621-1651. doi: 10.3390/ijms9091621. otwiera się w nowej karcie
  15. R. Kumar, CE. Wyman, Effects of cellulase and xylanase enzymes on the deconstruction of solids from pretreatment of poplar by leading technologies, Biotechnology Progress, 25 (2002) 302-14. doi: 10.1002/btpr.102. otwiera się w nowej karcie
  16. X-Z. Zhang, N. Sathitsuksanoh, Y-HP. Zhang, Glycoside hydrolase family 9 processive endoglucanase from Clostridium phytofermentans: Heterologous expression, characterization, and synergy with family 48 cellobiohydrolase, Bioresource Technology, 101 (2010) 5534-5535. doi: 10.1016/j.biortech.2010.01.152. otwiera się w nowej karcie
  17. RN. Gurram, S. Datta, YJ. Lin, SW. Snyder, TJ. Menkhaus, Removal of enzymatic and fermentation inhibitory compounds from biomass slurries for enhanced biorefinery process efficiencies, Bioresource Technology, 102 (2011) 7850-7859. doi: 10.1016/j.biortech.2011.05.043. otwiera się w nowej karcie
  18. Q. Qing, B. Yang, CE. Wyman, Xylooligomers are strong inhibitors of cellulose hydrolysis by enzymes, Bioresource Technology, 101 (2010) 9624-9630. doi: 10.1016/j.biortech.2010.06.137. otwiera się w nowej karcie
  19. SI. Mhlongo, R. Den Haan, M. Viljoen-Bloom, Van Zyl WH., Lignocellulosic hydrolysate inhibitors selectively inhibit/deactivate cellulase performance, Enzyme and Microbial Technology, 81 (2015) 16-22 .doi: 10.1016/j.enzmictec.2015.07.005. otwiera się w nowej karcie
  20. K. Chen, S. Hao, H. Lyu, G. Luo, S. Zhang, J. Chen, Ion exchange separation for recovery of monosaccharides, organic acids and phenolic compounds from hydrolysates of lignocellulosic biomass, Separation and Purification Technology, 172 (2017) 100-106. doi: 10.1016/j.seppur.2016.08.004. otwiera się w nowej karcie
  21. Z. Fuzfai, I. Boldizsar, I. Molnar-Perl, Characteristic fragmentation patterns of the trimethylsilyl and trimethylsilyl-oxime derivatives of various saccharides as obtained by gas chromatography coupled to ion-trap mass spectrometry, Journal of Chromatogrphy A., 1177 (2008) 183-189. doi: 10.1016/j.chroma.2007.11.023. otwiera się w nowej karcie
  22. R. Xie, M. Tu, Y. Wu, S. Adhikari, Improvement in HPLC separation of acetic acid and levulinic acid in the profiling of biomass hydrolysate, Bioresource Technology, 102 (2011) 4938-4942. doi: 10.1016/j.biortech.2011.01.050. otwiera się w nowej karcie
  23. G. Lodi, LA. Pellegrini, A. Alivverti, B. Rivas Torres, M. Morbidelli, Recovery of monosaccharides from lignocellulosic hydrolysates by ion exclusion chromatography, Journal of Chromatogrphy A, (2017) 25- 36. doi: 10.1016/j.chroma.2017.03.016. otwiera się w nowej karcie
  24. R. Datar, J. Huang, PC. Maness, A. Mohagheghi, S. Czernik, E. Chornet, Hydrogen production from the fermentation of corn stover biomass pretreated with a steam-explosion process, Internationa Journal of Hydrogen Energy, 32 (2007) 14245-14251. doi: 10.1016/j.ijhydene.2011.06.102. otwiera się w nowej karcie
  25. Y. Su, R. Du, H. Guo, M. Cao, Q. Wu, R. Su, Fractional pretreatment of lignocellulose by alkaline hydrogen peroxide: Characterization of its major components, Food Bioproduction Processing, 94 (2015) 322-330. doi: 10.1016/j.fbp.2014.04.001. otwiera się w nowej karcie
  26. B. Kaya, S. Irmak, A. Hasanoglu, O. Erbatur, Evaluation of various carbon materials supported Pt catalyts for aqueous-phase reforming of lignocellulosic biomass hydrolysate, International Journal of Hydrogen Energy, 39 (2014) 10135-10140. doi: 10.1016/j.ijhydene.2014.04.180. otwiera się w nowej karcie
  27. A. Wei, X. Zhang, D. Wei, G. Chen, Q. Wu, ST. Yang, Effects of cassava starch hydrolysate on cell growth and lipid accumulation of the heterotrophic microalgae Chlorella protothecoides, Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology, 36 (2009) 1383-1389. doi: 10.1007/s10295-009-0624-x. otwiera się w nowej karcie
  28. ISM. Rafiqul, AM. Mimi Sakinah, Kinetic studies on acid hydrolysis of Meranti wood sawdust for xylose production, Chemical Engeering Science, 71 (2012) 431-437. doi: 10.1016/j.ces.2011.11.007. otwiera się w nowej karcie
  29. HB. Klinke, BK. Ahring, AS. Schmidt, AB. Thomsen, Characterization of degradation products from alkaline wet oxidation of wheat straw, Bioresource Technology, 82 (2002) 15-26.
  30. A. Gautam, TJ. Menkhaus, Performance evaluation and fouling analysis for reverse osmosis and nanofiltration membranes during processing of lignocellulosic biomass hydrolysate, Journal of Membrane Science, 451 (2014) 93 -107. doi: 10.1590/0104-6632.20170341s20150082. otwiera się w nowej karcie
  31. K. Ziemiński, I. Romanowska, M. Kowalska, Enzymatic pretreatment of lignocellulosic wastes to improve biogas production, Waste Management, 32 (2012) 1131-7. doi: 10.1016/j.wasman.2012.01.016. otwiera się w nowej karcie
  32. L. Coulier, Y. Zha, R. Bas, PJ. Punt, Analysis of oligosaccharides in lignocellulosic biomass hydrolysates by high-performance anion-exchange chromatography coupled with mass spectrometry (HPAEC-MS), Bioresource Technology, 133 (2013) 221-231. doi: 10.1016/j.biortech.2013.01.085. otwiera się w nowej karcie
  33. CF. Crespo, M. Badshah, MT. Alvarez, B. Mattiasson, Ethanol production by continuous fermentation of d-(+)-cellobiose, d-(+)-xylose and sugarcane bagasse hydrolysate using the thermoanaerobe Caloramator boliviensis, Bioresource Technology, 103 (2012) 186-191. doi: 10.1016/j.biortech.2011.10.020. otwiera się w nowej karcie
  34. R. Bakker, A. Zeelend, D. Sanchez-Garcia, A. Punt, G. Eggink, Analysis of by-product formation and sugar monomerization in sugarcane bagasse pretreated at pilot plant scale: Differences between autohydrolysis, alkaline and acid pretreatment, Bioresource Technology, 181 (2015) 114-123. doi: 10.1016/j.biortech.2015.01.033. otwiera się w nowej karcie
  35. MKD. Rambo, Fl. Schmidt, MMC, Ferreira, Analysis of the lignocellulosic components of biomass residues for biorefinery opportunities, Talanta, 144 (2015) 696-703. doi: 10.1016/j.talanta.2015.06.045 otwiera się w nowej karcie
  36. F. Mechmech, H. Chadjaa, M. Rahni, M. Marinova, N. Ben Akacha, F. Gargouri, Improvement of butanol production from a hardwood hemicelluloses hydrolysate by combined sugar concentration and phenols removal, Bioresource Technology, 192 (2015) 287-295. doi: 10.1016/j.biortech.2015.05.012. otwiera się w nowej karcie
  37. A. Boussaid, Y. Cai, J. Robinson, DJ. Gregg, Q. Nguyen, JN. Saddler, Sugar recovery and fermentability of hemicellulose hydrolysates from steam-exploded softwoods containing bark, Biotechnology Progress, 887 (2017) 887-892. doi: 10.1021/bp010092b. otwiera się w nowej karcie
  38. A. Barakat, F. Monlau, JP. Steyer, H. Carrere, Effect of lignin-derived and furan compounds found in lignocellulosic hydrolysates on biomethane production, Bioresource Technology, 104 (2012) 90-9. doi: 10.1016/j.biortech.2011.10.060. otwiera się w nowej karcie
  39. Z. Wang, J. Zhuang, X. Wang, Z. Li, Y. Fu, M. Qin, Limited adsorption selectivity of active carbon toward non-saccharide compounds in lignocellulose hydrolysate, Bioresource Technology, 208 (2016) 195-199. doi: 10.1016/j.biortech.2016.02.072. otwiera się w nowej karcie
  40. B. Wang, YH. Rezenom, K-C. Cho, JL. Tran, DG. Lee, DH. Russell, Cultivation of lipid-producing bacteria with lignocellulosic biomass: Effects of inhibitory compounds of lignocellulosic hydrolysates, Bioresource Technology, 161 (2014) 162-170. doi: 10.1016/j.biortech.2014.02.133. otwiera się w nowej karcie
  41. PR. Waghmare, AA. Kadam, GD. Saratale, SP. Govindwar, Enzymatic hydrolysis and characterization of waste lignocellulosic biomass produced after dye bioremediation under solid state fermentation, Bioresource Technology, 168 (2014) 136-41. doi: 10.1016/j.biortech.2014.02.099. otwiera się w nowej karcie
  42. TLC Visualization Reagents., EMD Chem (2014)
  43. J. Heinonen, T. Sainio, Electrolyte exclusion chromatography using a multi-column recycling process: Fractionation of concentrated acid lignocellulosic hydrolysate, Separation and Purification Technology, 129 (2014) 137-149. doi: 10.1016/j.seppur.2014.03.031. otwiera się w nowej karcie
  44. B. Rafał, Corona CAD -nowa jakość w detekcji HPLC, Lab., (2010) 7-8.
  45. L-P. Yu., JE. Rollings, Quantitative branching of linear and branched polysaccharide mixtures by size exclusion chromatography and on-line low-angle laser light scattering detection, Journal of Applied Polymer Science, 35 (1988) doi: 10.1002/app.1988.070350420. otwiera się w nowej karcie
Źródła finansowania:
Weryfikacja:
Politechnika Gdańska

wyświetlono 176 razy

Publikacje, które mogą cię zainteresować

Meta Tagi