Titania Nanofiber Scaffolds with Enhanced Biointegration Activity—Preliminary In Vitro Studies - Publikacja - MOST Wiedzy

Wyszukiwarka

Titania Nanofiber Scaffolds with Enhanced Biointegration Activity—Preliminary In Vitro Studies

Abstrakt

The increasing need for novel bone replacement materials has been driving numerous studies on modifying their surface to stimulate osteogenic cells expansion and to accelerate bone tissue regeneration. The goal of the presented study was to optimize the production of titania-based bioactive materials with high porosity and defined nanostructure, which supports the cell viability and growth. We have chosen to our experiments TiO2 nanofibers, produced by chemical oxidation of Ti6Al4V alloy. Fibrous nanocoatings were characterized structurally (X-ray diraction (XRD)) and morphologically (scanning electron microscopy (SEM)). The wettability of the coatings and their mechanical properties were also evaluated. We have investigated the direct influence of the modified titanium alloy surfaces on the survival and proliferation of mesenchymal stem cells derived from adipose tissue (ADSCs). In parallel, proliferation of bone tissue cells—human osteoblasts MG-63 and connective tissue cells - mouse fibroblasts L929, as well as cell viability in co-cultures (osteoblasts/ADSCs and fibroblasts/ADSCs has been studied. The results of our experiments proved that among all tested nanofibrous coatings, the amorphous titania-based ones were the most optimal scaolds for the integration and proliferation of ADSCs, fibroblasts, and osteoblasts. Thus, we postulated these scaolds to have the osteopromotional potential. However, from the co-culture experiments it can be concluded that ADSCs have the ability to functionalize the initially unfavorable surface, and make it suitable for more specialized and demanding cells.

Cytowania

  • 1 1

    CrossRef

  • 0

    Web of Science

  • 1 1

    Scopus

Autorzy (5)

Cytuj jako

Pełna treść

pobierz publikację
pobrano 29 razy
Wersja publikacji
Accepted albo Published Version
Licencja
Creative Commons: CC-BY otwiera się w nowej karcie

Słowa kluczowe

Informacje szczegółowe

Kategoria:
Publikacja w czasopiśmie
Typ:
artykuły w czasopismach
Opublikowano w:
INTERNATIONAL JOURNAL OF MOLECULAR SCIENCES nr 20, strony 1 - 19,
ISSN: 1661-6596
Język:
angielski
Rok wydania:
2019
Opis bibliograficzny:
Ehlert M., Roszek K., Jędrzejewski T., Bartmański M., Radtke A.: Titania Nanofiber Scaffolds with Enhanced Biointegration Activity—Preliminary In Vitro Studies// INTERNATIONAL JOURNAL OF MOLECULAR SCIENCES -Vol. 20,iss. 24 (2019), s.1-19
DOI:
Cyfrowy identyfikator dokumentu elektronicznego (otwiera się w nowej karcie) 10.3390/ijms20225642
Bibliografia: test
  1. Cowden, K.; Dias-Netipanyj, M.F.; Popat, K.C. Effects of titania nanotube surfaces on osteogenic differentiation of human adipose-derived stem cells. Nanomed. Nanotechnol. Biol. Med. 2019, 17, 380-390. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  2. Babaie, E.; Bhaduri, S.B. Fabrication Aspects of Porous Biomaterials in Orthopedic Applications: A Review. ACS Biomater. Sci. Eng. 2018, 4, 1-39. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  3. Singla, R.; Abidi, S.M.S.; Dar, A.I.; Acharya, A. Nanomaterials as potential and versatile platform for next generation tissue engineering applications. J. Biomed. Mater. Res. Part B Appl. Biomater. 2019. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  4. Orapiriyakul, W.; Young, P.S.; Damiati, L.; Tsimbouri, P.M. Antibacterial surface modification of titanium implants in orthopaedics. J. Tissue Eng. 2018, 9. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  5. Radtke, A.; Grodzicka, M.; Ehlert, M.; Jędrzejewski, T.; Wypij, M.; Golińska, P. "To Be Microbiocidal and Not to Be Cytotoxic at the Same Time . . . "-Silver Nanoparticles and Their Main Role on the Surface of Titanium Alloy Implants. J. Clin. Med. 2019, 8, 334. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  6. Liu, X.Y.; Chu, P.K.; Ding, C.X. Surface modification of titanium, titanium alloys, and related materials for biomedical applications. Mater. Sci. Eng. R Rep. 2004, 47, 49-121. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  7. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 5642 otwiera się w nowej karcie
  8. Ingrassia, D.; Sladkova, M.; Palmer, M.; Xia, W.; Engqvist, H.; de Peppo, G.M. Stem cell-mediated functionalization of titanium implants. J. Mater. Sci. Mater. Med. 2017, 28, 133. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  9. Malec, K.; Góralska, J.; Hubalewska-Mazgaj, M.; Głowacz, P.; Jarosz, M.; Brzewski, P.; Sulka, G.D.; Jaskuła, M.; Wybrańska, J. Effects of nanoporous anodic titanium oxide on human adipose derived stem cells. Int. J. Nanomed. 2016, 11, 5349-5360. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  10. Liu, H.; Webster, T. Nanomedicine for implants: A review of studies and necessary experimental tools. Biomaterials 2007, 28, 354-369. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  11. Marini, F.; Luzi, E.; Fabbri, S.; Ciuffi, S.; Sorace, S.; Tognarini, I.; Galli, G.; Zonefrati, R.; Sbaiz, F.; Brandi, M.L. Osteogenic differentiation of adipose tissue-derived mesenchymal stem cells on nanostructured Ti6Al4V and Ti13Nb13Zr. Clin. Cases Miner. Bone Metab. 2015, 12, 224-237. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  12. Dias-Netipanyj, M.F.; Cowden, K.; Sopchenski, L.; Cogo, S.C.; Elifio-Esposito, S.; Popat, K.C.; Soares, P. Effect of crystalline phases of titania nanotube arrays on adipose derived stem cell adhesion and proliferation. Mater. Sci. Eng. C 2019, 103, 109850. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  13. Bressan, E.; Sbricoli, L.; Guazzo, R.; Tocco, I.; Roman, M.; Vindigni, V.; Stellini, E.; Gardin, C.; Ferroni, L.; Sivolella, S.; et al. Nanostructured Surfaces of Dental Implants. Int. J. Mol. Sci. 2013, 14, 1918-1931. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  14. Wang, L.N.; Jin, M.; Zheng, Y.; Guan, Y.; Lu, X.; Luo, J.L. Nanotubular surface modification of metallic implants via electrochemical anodization technique. Int. J. Nanomed. 2014, 9, 4421-4435. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  15. Tuukkanen, J.; Nakamura, M. Hydroxyapatite as a Nanomaterial for Advanced Tissue Engineering and Drug Therapy. Curr. Pharm. Des. 2017, 23, 3786-3793. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  16. Yu, M.; Lin, Y.; Liu, Y.; Zhou, Y.; Liu, C.; Dong, L.; Cheng, K.; Weng, W.; Wang, H. Enhanced Osteointegration of Hierarchical Structured 3D-Printed Titanium Implants. ACS Appl. Bio Mater. 2018, 1, 90-99. otwiera się w nowej karcie
  17. Radtke, A.; Ehlert, M.; Jędrzejewski, T.; Sadowska, B.; Więckowska-Szakiel, M.; Holopainen, J.; Ritala, M.; Leskelä, M.; Bartmański, M.; Szkodo, M.; et al. Titania Nanotubes/Hydroxyapatite Nanocomposites Produced with the Use of the Atomic Layer Deposition Technique: Estimation of Bioactivity and Nanomechanical Properties. Nanomaterials 2019, 9, 123. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  18. Radtke, A.; Ehlert, M.; Jędrzejewski, T.; Bartmański, M. The Morphology, Structure, Mechanical Properties and Biocompatibility of Nanotubular Titania Coatings before and after Autoclaving Process. J. Clin. Med. 2019, 8, 272. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  19. Wu, J.M. Low-temperature preparation of titania nanorods through direct oxidation of titanium with hydrogen peroxide. J. Cryst. Growth 2004, 269, 347-355. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  20. Radtke, A.; Bal, M.; Jędrzejewski, T. Novel Titania Nanocoatings Produced by Anodic Oxidation with the Use of Cyclically Changing Potential: Their Photocatalytic Activity and Biocompatibility. Nanomaterials 2018, 8, 712. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  21. Radtke, A.; Topolski, A.; Jędrzejewski, T.; Kozak, W.; Sadowska, B.; Więckowska-Szakiel, M.; Piszczek, P. Bioactivity Studies on Titania Coatings and the Estimation of Their Usefulness in the Modification of Implant Surfaces. Nanomaterials 2017, 7, 90. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  22. Gulati, K.; Maher, S.; Findlay, D.M.; Losic, D. Titania nanotubes for orchestrating osteogenesis at the bone-implant interface. Nanomedicine 2016, 11, 1847-1864. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  23. Biswas, A.; Srikant, P.V.S.; Manna, I.; Chatterjee, U.K.; Majumdar, J.D. Chemical oxidation of Ti-6Al-4V for improved wear and corrosion resistance. Surf. Eng. 2008, 24, 442-446. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  24. Variola, F.; Lauria, A.; Nanci, A.; Rosei, F. Influence of Treatment Conditions on the Chemical Oxidative Activity of H 2 SO 4 /H 2 O 2 Mixtures for Modulating the Topography of Titanium. Adv. Eng. Mater. 2009, 11. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  25. Liu, W.; Liu, S.; Wang, L. Surface Modification of Biomedical Titanium Alloy: Micromorphology, Microstructure Evolution and Biomedical Applications. Coatings 2019, 9, 249. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  26. Nanci, A.; Wuest, J.D.; Peru, L.; Brunet, P.; Sharma, V.; Zalzal, S.; McKee, M.D. Chemical modification of titanium surfaces for covalent attachment of biological molecules. J. Biomed. Mater. Res. 1998, 40, 324-335. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  27. Radtke, A. 1D Titania Nanoarchitecture as Bioactive and Photoactive Coatings for Modern Implants: A Review. In Application of Titanium Dioxide; otwiera się w nowej karcie
  28. Magdalena, J., Ed.; IntechOpen: Rijeka, Croatia, 2017. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  29. Xiao, F.; Tsuru, K.; Hayakawa, S.; Osaka, A. In vitro apatite deposition on titania film derived from chemical treatment of Ti substrates with an oxysulfate solution containing hydrogen peroxide at low temperature. Thin Solid Films 2003, 441, 271-276. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  30. Walivaara, B.; Aronsson, B.O.; Rodahl, M.; Lausmma, J.; Tengvall, P. Titanium with different oxides: In vitro studies of protein adsorption and contact activation. Biomaterials 1994, 15, 827-834. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  31. Martino, S.; D'Angelo, F.; Armentano, I.; Kenny, J.M.; Orlacchio, A. Stem cell-biomaterial interactions for regenerative medicine. Biotechnol. Adv. 2012, 30, 338-351. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  32. Cowden, K.; Dias-Netipanyj, M.F.; Popat, K.C. Adhesion and Proliferation of Human Adipose-Derived Stem Cells on Titania Nanotube Surfaces. Regen. Eng. Transl. Med. 2019, 1-11. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  33. Ciuffi, S.; Zonefrati, R.; Brandi, M.L. Adipose stem cells for bone tissue repair. Clin. Cases Miner. Bone Metab. 2017, 14, 217-226. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  34. Vercellino, M.; Ceccarelli, G.; Cristofaro, F.; Balli, M.; Bertoglio, F.; Bruni, G.; Benedetti, L.; Avanzini, M.A.; Imbriani, M.; Visai, L. Nanostructured TiO 2 Surfaces Promote Human Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells Differentiation to Osteoblasts. Nanomaterials 2016, 6, 124. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  35. James, A.W.; Zara, J.N.; Zhang, X.; Askarinam, A.; Goyal, R.; Chiang, M.; Yuan, W.; Chang, L.; Corselli, M.; Shen, J.; et al. Perivascular stem cells: A prospectively purified mesenchymal stem cell population for bone tissue engineering. Stem Cells Transl. Med. 2012, 1, 510-519. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  36. Caplan, A.I. Mesenchymal stem cells. J. Orthop. Res. 1991, 9, 641-650. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  37. Lindroos, B.; Suuronen, R.; Miettinen, S. The potential of adipose stem cells in regenerative medicine. Stem Cell Rev. Rep. 2011, 7, 269-291. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  38. Mazini, L.; Rochette, L.; Amine, M.; Malka, G. Regenerative Capacity of Adipose Derived Stem Cells (ADSCs), Comparison with Mesenchymal Stem Cells (MSCs). Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2523. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  39. Gimble, J.M.; Katz, A.J.; Bunnell, B.A. Adiposed-derived stem cells for regenerative medicine. Circ. Res. 2007, 100, 1249-1260. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  40. Hattori, H.; Sato, M.; Masuoka, K.; Ishihara, M.; Kikuchi, T.; Matsui, T.; Takase, B.; Ishizuka, T.; Kikuchi, M.; Fujikawa, K.; et al. Osteogenic potential of human adipose tissue derived stromal cells as an alternative stem cell source. Cells Tissues Organs 2004, 178, 2-12. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  41. De Ugarte, D.A.; Morizono, K.; Elbarbary, A.; Alfonso, Z.; Zuk, P.A.; Zhu, M.; Dragoo, J.L.; Ashjian, P.; Thomas, B.; Benhaim, P.; et al. Comparison of multi-lineage cell from human adipose tissue and bone marrow. Cells Tissues Organs 2003, 174, 101-109. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  42. Bunnell, B.A.; Flaat, M.; Gagliardi, C.; Patel, B.; Ripoll, C. Adipose-derived stem cells: Isolation, expansion and differentiation. Methods 2008, 45, 115-120. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  43. Lewallen, E.A.; Jones, D.L.; Dudakovic, A.; Thaler, R.; Paradise, C.R.; Kremers, H.M.; Abdel, M.P.; Kakar, S.; Dietz, A.B.; Cohene, R.C.; et al. Osteogenic potential of human adipose-tissue-derived mesenchymal stromal cells cultured on 3D-printed porous structured titanium. Gene 2016, 581, 95-106. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  44. Safford, K.M.; Safford, S.D.; Gimble, J.M.; Shetty, A.K.; Rice, H.E. Characterization of neuronal/glial differentiation of murine adipose-derived adult stromal cells. Exp. Neurol. 2004, 187, 319-328. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  45. Alonso-Goulart, V.; Ferreira, L.B.; Duarte, C.A.; Lemos de Lima, I.; Ferreira, E.R.; Candido de Oliveira, B.; Vargas, L.N.; Dotto de Moraes, D.; Silva, I.B.B.; de Oliveira Faria, R.; et al. Mesenchymal stem cells from human adipose tissue and bone repair: A literature review. Biotechnol. Res. Innov. 2018, 2, 74-80. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  46. Gastaldi, G.; Asti, A.; Scaffino, M.F.; Visai, L.; Saino, E.; Cometa, A.M.; Benazzo, F. Human adipose-derived stem cells (hASCs) proliferate and differentiatein osteoblast-like cells on trabecular titanium scaffolds. J. Biomed. Mater. Res. Part A 2010, 94, 790-799. otwiera się w nowej karcie
  47. Rozila, I.; Azari, P.; Munirah, S.; Wan Safwani, W.K.; Gan, S.N.; Nur Azurah, A.G.; Jahendran, J.; Pingguan-Murphy, B.; Chua, K.H. Differential osteogenic potential of human adipose-derived stem cells co-cultured with human osteoblasts on polymeric microfiber scaffolds. J. Biomed. Mater. Res. Part A 2016, 104, 377-387. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  48. Zellner, J.; Mueller, M.; Berner, A.; Dienstknecht, T.; Kujat, R.; Nerlich, M.; Hennemann, B.; Koller, M.; Prantl, L.; Angele, M.; et al. Role of mesenchymal stem cells in tissue engineering of meniscus. J. Biomed. Mater. Res. Part A 2010, 94, 1150-1161. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  49. Park, B.S.; Jang, K.A.; Sung, J.H. Adipose-derived stem cells and their secretory factors as a promising therapy for skin aging. Dermatol. Surg. 2008, 34, 1323-1326. [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  50. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 5642 otwiera się w nowej karcie
  51. Shen, X.; Du, Y.; Shen, W.; Xue, B.; Zhao, Y. Adipose-derived stem cells promote human dermal fibroblast function and increase senescence-associated β-galactosidase mRNA expression through paracrine effects. Mol. Med. Rep. 2014, 10, 3068-3072. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  52. Thamaphat, K.; Limsuwan, P.; Ngotawornchai, B. Phase Characterization of TiO 2 Powder by XRD and TEM. Kasetsart J. Nat. Sci. 2008, 42, 357-361.
  53. Park, J.Y.; Lee, I.H. Characterization and Morphology of Prepared Titanium Dioxide Nanofibers by Electrospinning. J. Nanosci. Nanotechnol. 2010, 10, 3402-3405. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  54. Aiempanakit, M.; Helmersson, U.; Aijaz, A.; Larsson, P.; Magnusson, R.; Jensen, J.; Kubart, T. Effect of peak power in reactive high power impulse magnetron sputtering of titanium dioxide. Surf. Coat. Technol. 2011, 205, 4828-4831. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  55. Sarma, B.K.; Pal, A.R.; Bailung, H.; Chutia, J. Growth of nanocrystalline TiO 2 thin films and crystal anisotropy of anatase phase deposited by direct current reactive magnetron sputtering. Mater. Chem. Phys. 2013, 139, 979-987. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  56. Jing, F.J.; Yukimura, K.; Kato, H.; Lei, Y.F.; You, T.X.; Leng, Y.X.; Huang, N. Film characterization of titanium oxide films prepared by high-power impulse magnetron sputtering. Surf. Coat. Technol. 2011, 206, 967-971. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  57. Leyland, A.; Matthews, A. Design criteria for wear-resistant nanostructured and glassy-metal coatings. Surf. Coat. Technol. 2004, 177, 317-324. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  58. Jemat, A.; Ghazali, M.J.; Razali, M.; Otsuka, Y.; Rajabi, A. Effects of TiO 2 on microstructural, mechanical properties and in-vitro bioactivity of plasma sprayed yttria stabilised zirconia coatings for dental application. Ceram. Int. 2017, 44, 4271-4281. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  59. Beake, B.D.; Vishnyakov, V.M.; Valizadeh, R.; Colligon, J.S. Influence of mechanical properties on the nanoscratch behaviour of hard nanocomposite TiN/Si 3 N 4 coatings on Si. J. Phys. D Appl. Phys. 2006, 39, 1392-1397. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  60. Wu, Y.; Zitelli, J.P.; TenHuisen, K.S.; Yu, X.; Libera, M.R. Differential response of Staphylococci and osteoblasts to varying titanium surface roughness. Biomaterials 2011, 32, 951-960. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  61. Zhou, W.; Zhong, X.; Wu, X.; Yuan, L.; Zhao, Z.; Wang, H.; Xia, Y.; Feng, Y.; He, J.; Chen, W. The effect of surface roughness and wettability of nanostructured TiO 2 film on TCA-8113 epithelial-like cells. Surf. Coat. Technol. 2006, 200, 6155-6160. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  62. Le Guéhennec, L.; Soueidan, A.; Layrolle, P.; Amouriq, Y. Surface treatments of titanium dental implants for rapid osseointegration. Dent. Mater. 2007, 23, 844-854. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  63. Boyan, B.D.; Hummert, T.W.; Dean, D.D.; Schwartz, Z. Role of material surfaces in regulating bone and cartilage cell response. Biomaterials 1996, 17, 137-146. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  64. Bartmanski, M.; Zielinski, A.; Majkowska-Marzec, B.; Strugala, G. Effects of solution composition and electrophoretic deposition voltage on various properties of nanohydroxyapatite coatings on the Ti13Zr13Nb alloy. Ceram. Int. 2018, 44, 19236-19246. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  65. Sarraf, M.; Razak, B.A.; Nasiri-Tabrizi, B.; Dabbagh, A.; Kasim, N.H.A.; Basirun, W.J.; Bin Sulaiman, E. Nanomechanical properties, wear resistance and in-vitro characterization of Ta 2 O 5 nanotubes coating on biomedical grade Ti-6Al-4V. J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 2017, 66, 159-171. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  66. Silva, A.P.; Booth, F.; Garrido, L.; Aglietti, E.; Pena, P.; Baudín, C. Young's modulus and hardness of multiphase CaZrO 3 -MgO ceramics by micro and nanoindentation. J. Eur. Ceram. Soc. 2017, 38, 2194-2201. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  67. Abdel-Hady Gepreel, M.; Niinomi, M. Biocompatibility of Ti-alloys for long-term implantation. J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 2013, 20, 407-415. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  68. Kaabi Falahieh Asl, S.; Nemeth, S.; Tan, M.J. Electrophoretic deposition of hydroxyapatite coatings on AZ31 magnesium substrate for biodegradable implant applications. Prog. Cryst. Growth Charact. Mater. 2014, 60, 74-79. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  69. Matsugi, K.; Endo, T.; Choi, Y.B.; Sasaki, G. Alloy design of Ti alloys using ubiquitous alloying elements and characteristics of their levitation-melted alloys. Mater. Trans. 2010, 51, 740-748. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  70. Karimzadeh, A.; Ayatollahi, M.R.; Bushroa, A.R.; Herliansyah, M.K. Effect of sintering temperature on mechanical and tribological properties of hydroxyapatite measured by nanoindentation and nanoscratch experiments. Ceram. Int. 2014, 40, 9159-9164. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  71. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 5642 otwiera się w nowej karcie
  72. Bartmanski, M.; Zielinski, A.; Jazdzewska, M.; Głodowska, J.; Kalka, P. Effects of electrophoretic deposition times and nanotubular oxide surfaces on properties of the nanohydroxyapatite/nanocopper coating on the Ti13Zr13Nb alloy. Ceram. Int. 2019, 45, 20002-20010. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  73. Cedillo-Gonzalez, E.I.; Montorosi, M.; Mugoni, C.; Montorosi, M.; Siligardi, C. Improvement of the adhesion between TiO 2 nanofilm and glass substrate by roughness modifications. Phys. Procedia 2013, 40, 19-29. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  74. Manoj Kumar, R.; Kuntal, K.K.; Singh, S.; Gupta, P.; Bhushan, B.; Gopinath, P.; Lahiri, D. Electrophoretic deposition of hydroxyapatite coating on Mg-3Zn alloy for orthopedic application. Surf. Coat. Technol. 2016, 287, 82-92. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  75. Furuhashi, A.; Ayukawa, Y.; Atsuta, I.; Okawachi, H.; Koyano, K. The difference of fibroblast behavior on titanium substrata with different surface characteristics. Odontology 2012, 100, 199-205. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  76. Burmester, A.; Luthringer, B.; Willumeit, R.; Feyerabend, F. Comparison of the reaction of bone-derived cells to enhanced MgCl 2 -salt concentrations. Biomatter 2014, 4, e967616. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  77. Thrivikraman, G.; Madras, G.; Basu, B. In vitro/In vivo assessment and mechanisms of toxicity of bioceramic materials and its wear particulates. RSC Adv. 2014, 4, 12763-12781. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  78. Bressan, E.; Botticelli, D.; Sivolella, S.; Bengazi, F.; Guazzo, R.; Sbricoli, L.; Ricci, S.; Ferroni, L.; Gardin, C.; Velez, J.U.; et al. Adipose-derived stem cells as a tool for dental implant osseointegration: An experimental study in the dog. Int. J. Mol. Cell. Med. 2015, 4, 197-208. [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  79. Vizoso, F.J.; Eiro, N.; Cid, S.; Schneider, J.; Perez-Fernandez, R. Mesenchymal Stem Cell Secretome: Toward Cell-Free Therapeutic Strategies in Regenerative Medicine. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 1852. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  80. Gershovich, J.G.; Dahlin, R.L.; Kasper, F.K.; Mikos, A.G. Enhanced osteogenesis in cocultures with human mesenchymal stem cells and endothelial cells on polymeric microfiber scaffolds. Tissue Eng. Part A 2013, 19, 2565-2576. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  81. Birmingham, E.; Niebur, G.L.; McHugh, P.E.; Shaw, G.; Barry, F.P.; McNamara, L.M. Osteogenic differentiation of mesenchymal stem cells is regulated by osteocyte and osteoblast cells in a simplified bone niche. Eur. Cells Mater. 2012, 23, 13-27. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  82. Hubka, K.M.; Dahlin, R.L.; Meretoja, V.V.; Kasper, F.K.; Mikos, A.G. Enhancing chondrogenic phenotype for cartilage tissue engineering: Monoculture and coculture of articular chondrocytes and mesenchymal stem cells. Tissue Eng. Part B Rev. 2014, 20, 641-654. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  83. Sayes, C.M.; Wahi, R.; Kurian, P.A.; Liu, Y.; West, J.L.; Ausman, K.D.; Warheit, D.B.; Colvin, V.L. Correlating nanoscale titania structure with toxicity: A cytotoxicity and inflammatory response study with human dermal fibroblasts and human lung epithelial cells. Toxicol. Sci. 2006, 92, 174-185. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  84. Ebrahimi, M.; Pripatnanont, P.; Suttapreyasri, S.; Monmaturapoj, N. In vitro biocompatibility analysis of novel nano-biphasic calcium phosphate scaffolds in different composition ratios. J. Biomed. Mater. Res. Part B Appl. Biomater. 2014, 102, 52-61. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  85. Geiger, B.; Bershadsky, A.; Pankov, R.; Yamada, K.M. Transmembrane extracellular matrix-cytoskeleton crosstalk. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2001, 2, 793-805. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
Weryfikacja:
Politechnika Gdańska

wyświetlono 86 razy

Publikacje, które mogą cię zainteresować

Meta Tagi