Platelets in fetal growth restriction: role of reactive oxygen species, oxygen metabolism, and aggregation.
Abstrakt
Fetal growth restriction (FGR) is mainly caused by failure of the uteroplacental unit. The
exact pathogenesis remains unclear. The cause is thought to be related to abnormal platelet activation,
which may result in microthrombus formation in the small vessels of the placenta. Reactive oxygen
species (ROS) may initiate the pathological process of platelet activation. This study aimed to evaluate
selected platelet parameters in pregnancy complicated by FGR and relate them to the severity of
hemodynamic abnormalities. A total of 135 women (pregnant with FGR, with an uncomplicated
pregnancy, and non-pregnant) were enrolled to study different platelet parameters: count (PLT), mean
volume (MPV), ROS levels, intracellular oxygen level, oxygen consumption, and aggregation indices.
No abnormalities in PLT and MPV were found in the FGR group, although it revealed increased ROS
levels in platelets, lower platelet oxygen consumption, and intraplatelet deprivation. Aggregation
parameters were similar as in uncomplicated pregnancy. No significant relationships were observed
between hemodynamic abnormalities and the studied parameters. Platelets in pregnancies compli-
cated by FGR may reveal an impaired oxidative metabolism, which may, in turn, lead to oxidative
stress and, consequently, to an impaired platelet function. This study adds to the understanding of
the role of platelets in the etiology of FGR.
Cytowania
-
6
CrossRef
-
0
Web of Science
-
6
Scopus
Autorzy (5)
Cytuj jako
Pełna treść
- Wersja publikacji
- Accepted albo Published Version
- Licencja
- otwiera się w nowej karcie
Słowa kluczowe
Informacje szczegółowe
- Kategoria:
- Publikacja w czasopiśmie
- Typ:
- Publikacja w czasopiśmie
- Opublikowano w:
-
Cells
nr 11,
strony 1 - 13,
ISSN: 2073-4409 - Rok wydania:
- 2022
- DOI:
- Cyfrowy identyfikator dokumentu elektronicznego (otwiera się w nowej karcie) 10.3390/cells11040724
- Bibliografia: test
-
- Gagnon, R. Placental Insufficiency and Its Consequences. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2003, 11 (Suppl. S1), 99-107. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Figueras, F.; Gratacós, E. Update on the Diagnosis and Classification of Fetal Growth Restriction and Proposal of a Stage-Based Management Protocol. Fetal Diagn. Ther. 2014, 36, 86-98. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- American College of Obstetricians and Gynecologists' Committee on Practice Bulletins-Obstetrics and the Society forMaternal- FetalMedicin. ACOG Practice Bulletin No. 204: Fetal Growth Restriction. Obstet. Gynecol. 2019, 133, e97-e109. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Salafia, C.M.; Minior, V.K.; Pezzullo, J.C.; Popek, E.J.; Rosenkrantz, T.S.; Vintzileos, A.M. Intrauterine Growth Restriction in Infants of Less than Thirty-Two Weeks' Gestation: Associated Placental Pathologic Features. Am. J. Obstet. Gynecol. 1995, 173, 1049-1057. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Doppler Studies in Fetal Hypoxemic Hypoxia. Available online: https://sonoworld.com/client/fetus/html/doppler/capitulos- html/chapter_04.htm (accessed on 4 February 2022). otwiera się w nowej karcie
- Brosens, I.; Dixon, H.G.; Robertson, W.B. Fetal Growth Retardation and the Arteries of the Placental Bed. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1977, 84, 656-663. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Khong, T.; Wolf, F.D.; Robertson, W.B.; Brosens, I. Inadequate Maternal Vascular Response to Placentation in Pregnancies Complicated by Pre-Eclampsia and by Small-for-Gestational Age Infants. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1986, 93, 1049-1059. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Giles, W.B.; Trudinger, B.J.; Baird, P.J. Fetal Umbilical Artery Flow Velocity Waveforms and Placental Resistance: Pathological Correlation. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1985, 92, 31-38. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Sheppard, B.L.; Bonnar, J. An Ultrastructural Study of Utero-Placental Spiral Arteries in Hypertensive and Normotensive Pregnancy and Fetal Growth Retardation. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1981, 88, 695-705. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Norris, L.A.; Sheppard, B.L.; Burke, G.; Bonnar, J. Platelet Activation in Normotensive and Hypertensive Pregnancies Complicated by Intrauterine Growth Retardation. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1994, 101, 209-214. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Burton, G.J.; Jauniaux, E. Pathophysiology of Placental-Derived Fetal Growth Restriction. Am. J. Obstet. Gynecol. 2018, 218, S745-S761. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Ellison, P.T.; Jasienska, G. Constraint, Pathology, and Adaptation: How Can We Tell Them Apart? Am. J. Hum. Biol. 2007, 19, 622-630. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Gardosi, J.; Madurasinghe, V.; Williams, M.; Malik, A.; Francis, A. Maternal and Fetal Risk Factors for Stillbirth: Population Based Study. BMJ 2013, 346, f108. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Klinger, M.H.F.; Jelkmann, W. Role of Blood Platelets in Infection and Inflammation. J. Interferon Cytokine Res. 2002, 22, 913-922. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Sugimura, M.; Kobayashi, T.; Shu, F.; Kanayama, N.; Terao, T. Annexin V Inhibits Phosphatidylserine-Induced Intrauterine Growth Restriction in Mice. Placenta 1999, 20, 555-560. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Gordijn, S.J.; Beune, I.M.; Thilaganathan, B.; Papageorghiou, A.; Baschat, A.A.; Baker, P.N.; Silver, R.M.; Wynia, K.; Ganzevoort, W. Consensus Definition of Fetal Growth Restriction: A Delphi Procedure. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2016, 48, 333-339. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Lewandowska, M.; Sajdak, S.; Więckowska, B.; Manevska, N.; Lubiński, J. The Influence of Maternal BMI on Adverse Pregnancy Outcomes in Older Women. Nutrients 2020, 12, 2838. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Komosa, A.; Rzymski, P.; Perek, B.; Ropacka-Lesiak, M.; Lesiak, M.; Siller-Matula, J.M.; Poniedziałek, B. Platelets Redox Balance Assessment: Current Evidence and Methodological Considerations. Vasc. Pharmacol. 2017, 93-95, 6-13. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Gomes, A.; Fernandes, E.; Lima, J.L.F.C. Fluorescence Probes Used for Detection of Reactive Oxygen Species. J. Biochem. Biophys. Methods 2005, 65, 45-80. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Dikalov, S.I.; Harrison, D.G. Methods for Detection of Mitochondrial and Cellular Reactive Oxygen Species. Antioxid. Redox Signal. 2014, 20, 372-382. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Poniedziałek, B.; Nowaczyk, J.; Ropacka-Lesiak, M.; Niedzielski, P.; Komosa, A.; Pańczak, K.; Rzymski, P. The Altered Platelet Mineral Ratios in Pregnancy Complicated with Intrauterine Growth Restriction. Reprod. Toxicol. 2018, 76, 46-52. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Barker, D.J.; Osmond, C.; Law, C.M. The Intrauterine and Early Postnatal Origins of Cardiovascular Disease and Chronic Bronchitis. J. Epidemiol. Community Health 1989, 43, 237-240. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- de Jong, M.; Cranendonk, A.; van Weissenbruch, M.M. Components of the Metabolic Syndrome in Early Childhood in Very-Low- Birth-Weight Infants and Term Small and Appropriate for Gestational Age Infants. Pediatr. Res. 2015, 78, 457-461. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Kesavan, K.; Devaskar, S.U. Intrauterine Growth Restriction: Postnatal Monitoring and Outcomes. Pediatr. Clin. N. Am. 2019, 66, 403-423. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Schoots, M.H.; Gordijn, S.J.; Scherjon, S.A.; van Goor, H.; Hillebrands, J.-L. Oxidative Stress in Placental Pathology. Placenta 2018, 69, 153-161. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Burton, G.J.; Jauniaux, E. Oxidative Stress. Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2011, 25, 287-299. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Theilen, L.H.; Campbell, H.D.; Mumford, S.L.; Purdue-Smithe, A.C.; Sjaarda, L.A.; Perkins, N.J.; Radoc, J.G.; Silver, R.M.; Schisterman, E.F. Platelet Activation and Placenta-Mediated Adverse Pregnancy Outcomes: An Ancillary Study to the Effects of Aspirin in Gestation and Reproduction Trial. Am. J. Obstet. Gynecol. 2020, 223, 741.e1-741.e12. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Krötz, F.; Sohn, H.-Y.; Pohl, U. Reactive Oxygen Species: Players in the Platelet Game. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2004, 24, 1988-1996. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Wachowicz, B.; Olas, B.; Zbikowska, H.M.; Buczyński, A. Generation of Reactive Oxygen Species in Blood Platelets. Platelets 2002, 13, 175-182. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Pratico, D.; Iuliano, L.; Pulcinelli, F.M.; Bonavita, M.S.; Gazzaniga, P.P.; Violi, F. Hydrogen Peroxide Triggers Activation of Human Platelets Selectively Exposed to Nonaggregating Concentrations of Arachidonic Acid and Collagen. J. Lab. Clin. Med. 1992, 119, 364-370.
- Irani, K.; Pham, Y.; Coleman, L.D.; Roos, C.; Cooke, G.E.; Miodovnik, A.; Karim, N.; Wilhide, C.C.; Bray, P.F.; Goldschmidt- Clermont, P.J. Priming of Platelet AlphaIIbbeta3 by Oxidants Is Associated with Tyrosine Phosphorylation of Beta3. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 1998, 18, 1698-1706. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Leo, R.; Praticò, D.; Iuliano, L.; Pulcinelli, F.M.; Ghiselli, A.; Pignatelli, P.; Colavita, A.R.; FitzGerald, G.A.; Violi, F. Platelet Activation by Superoxide Anion and Hydroxyl Radicals Intrinsically Generated by Platelets That Had Undergone Anoxia and Then Reoxygenated. Circulation 1997, 95, 885-891. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Yamagishi, S.I.; Edelstein, D.; Du, X.L.; Brownlee, M. Hyperglycemia Potentiates Collagen-Induced Platelet Activation through Mitochondrial Superoxide Overproduction. Diabetes 2001, 50, 1491-1494. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Krötz, F.; Sohn, H.Y.; Gloe, T.; Zahler, S.; Riexinger, T.; Schiele, T.M.; Becker, B.F.; Theisen, K.; Klauss, V.; Pohl, U. NAD(P)H Oxidase-Dependent Platelet Superoxide Anion Release Increases Platelet Recruitment. Blood 2002, 100, 917-924. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Clutton, P.; Miermont, A.; Freedman, J.E. Regulation of Endogenous Reactive Oxygen Species in Platelets Can Reverse Aggrega- tion. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2004, 24, 187-192. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Oparka, M.; Walczak, J.; Malinska, D.; van Oppen, L.M.P.E.; Szczepanowska, J.; Koopman, W.J.H.; Wieckowski, M.R. Quantifying ROS Levels Using CM-H2DCFDA and HyPer. Methods 2016, 109, 3-11. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Ravera, S.; Panfoli, I. Platelet Aerobic Metabolism: New Perspectives. J. Unexplor. Med. Data 2019, 2019, 7. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Perry, C.G.R.; Kane, D.A.; Lanza, I.R.; Neufer, P.D. Methods for Assessing Mitochondrial Function in Diabetes. Diabetes 2013, 62, 1041-1053. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Dmitriev, R.I.; Zhdanov, A.V.; Jasionek, G.; Papkovsky, D.B. Assessment of Cellular Oxygen Gradients with a Panel of Phospho- rescent Oxygen-Sensitive Probes. Anal. Chem. 2012, 84, 2930-2938. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Somkhit, J.; Loyant, R.; Brenet, A.; Hassan-Abdi, R.; Yanicostas, C.; Porceddu, M.; Borgne-Sanchez, A.; Soussi-Yanicostas, N. A Fast, Simple, and Affordable Technique to Measure Oxygen Consumption in Living Zebrafish Embryos. Zebrafish 2020, 17, 268-270. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Hynes, J.; Marroquin, L.D.; Ogurtsov, V.I.; Christiansen, K.N.; Stevens, G.J.; Papkovsky, D.B.; Will, Y. Investigation of Drug- Induced Mitochondrial Toxicity Using Fluorescence-Based Oxygen-Sensitive Probes. Toxicol. Sci. 2006, 92, 186-200. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Will, Y.; Hynes, J.; Ogurtsov, V.I.; Papkovsky, D.B. Analysis of Mitochondrial Function Using Phosphorescent Oxygen-Sensitive Probes. Nat. Protoc. 2006, 1, 2563-2572. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Kondrashina, A.V.; Ogurtsov, V.I.; Papkovsky, D.B. Comparison of the Three Optical Platforms for Measurement of Cellular Respiration. Anal. Biochem. 2015, 468, 1-3. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Fercher, A.; Borisov, S.M.; Zhdanov, A.V.; Klimant, I.; Papkovsky, D.B. Intracellular O 2 Sensing Probe Based on Cell-Penetrating Phosphorescent Nanoparticles. ACS Nano 2011, 5, 5499-5508. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Fercher, A.; O'Riordan, T.C.; Zhdanov, A.V.; Dmitriev, R.I.; Papkovsky, D.B. Imaging of Cellular Oxygen and Analysis of Metabolic Responses of Mammalian Cells. Methods Mol. Biol. 2010, 591, 257-273. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Rumsey, W.L.; Vanderkooi, J.M.; Wilson, D.F. Imaging of Phosphorescence: A Novel Method for Measuring Oxygen Distribution in Perfused Tissue. Science 1988, 241, 1649-1651. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- O'Riordan, T.C.; Fitzgerald, K.; Ponomarev, G.V.; Mackrill, J.; Hynes, J.; Taylor, C.; Papkovsky, D.B. Sensing Intracellular Oxygen Using Near-Infrared Phosphorescent Probes and Live-Cell Fluorescence Imaging. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2007, 292, R1613-R1620. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Melchinger, H.; Jain, K.; Tyagi, T.; Hwa, J. Role of Platelet Mitochondria: Life in a Nucleus-Free Zone. Front. Cardiovasc. Med. 2019, 6, 153. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Valera, M.-C.; Parant, O.; Vayssiere, C.; Arnal, J.-F.; Payrastre, B. Physiologic and Pathologic Changes of Platelets in Pregnancy. Platelets 2010, 21, 587-595. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Kanat-Pektas, M.; Yesildager, U.; Tuncer, N.; Arioz, D.T.; Nadirgil-Koken, G.; Yilmazer, M. Could Mean Platelet Volume in Late First Trimester of Pregnancy Predict Intrauterine Growth Restriction and Pre-Eclampsia? J. Obstet. Gynaecol. Res. 2014, 40, 1840-1845. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Manten, G.T.R.; Sikkema, M.J.; Voorbij, H.A.M.; Visser, G.H.A.; Bruinse, H.W.; Franx, A. Risk Factors for Cardiovascular Disease in Women with a History of Pregnancy Complicated by Preeclampsia or Intrauterine Growth Restriction. Hypertens. Pregnancy 2007, 26, 39-50. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Bujold, E.; Roberge, S.; Lacasse, Y.; Bureau, M.; Audibert, F.; Marcoux, S.; Forest, J.-C.; Giguère, Y. Prevention of Preeclampsia and Intrauterine Growth Restriction with Aspirin Started in Early Pregnancy: A Meta-Analysis. Obstet. Gynecol. 2010, 116, 402-414. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Blomqvist, L.R.F.; Strandell, A.M.; Baghaei, F.; Hellgren, M.S.E. Platelet Aggregation in Healthy Women during Normal Pregnancy-A Longitudinal Study. Platelets 2019, 30, 438-444. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Can, M.M.; Kaymaz, C.; Can, E.; Tanboga, I.H.; Api, O.; Kars, B.; Ceren Tokgoz, H.; Turkyilmaz, E.; Akgun, T.; Sonmez, K.; et al. Whole Blood Platelet Aggregation Failed to Detect Differences between Preeclampsia and Normal Pregnancy. Platelets 2010, 21, 496-497. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Navaratnam, K.; Alfirevic, A.; Jorgensen, A.; Alfirevic, Z. Aspirin Non-Responsiveness in Pregnant Women at High-Risk of Pre-Eclampsia. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2018, 221, 144-150. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Norris, L.A.; Gleeson, N.; Sheppard, B.L.; Bonnar, J. Whole Blood Platelet Aggregation in Moderate and Severe Pre-Eclampsia. BJOG Int. J. Obstet. Gynaecol. 1993, 100, 684-688. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Lam, F.W.; Vijayan, K.V.; Rumbaut, R.E. Platelets and Their Interactions with Other Immune Cells. Compr. Physiol. 2015, 5, 1265-1280. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Tsoupras, A.; Zabetakis, I.; Lordan, R. Platelet Aggregometry Assay for Evaluating the Effects of Platelet Agonists and Antiplatelet Compounds on Platelet Function in Vitro. MethodsX 2019, 6, 63-70. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Weryfikacja:
- Brak weryfikacji
wyświetlono 62 razy
Publikacje, które mogą cię zainteresować
The Chitosan-Based System with Scutellariae baicalensis radix Extract for the Local Treatment of Vaginal Infections
- J. Chanaj-Kaczmarek,
- N. Rosiak,
- E. Wender-Ozegowska
- + 3 autorów