Platelets in fetal growth restriction: role of reactive oxygen species, oxygen metabolism, and aggregation. - Publikacja - MOST Wiedzy

Wyszukiwarka

Platelets in fetal growth restriction: role of reactive oxygen species, oxygen metabolism, and aggregation.

Abstrakt

Fetal growth restriction (FGR) is mainly caused by failure of the uteroplacental unit. The
exact pathogenesis remains unclear. The cause is thought to be related to abnormal platelet activation,
which may result in microthrombus formation in the small vessels of the placenta. Reactive oxygen
species (ROS) may initiate the pathological process of platelet activation. This study aimed to evaluate
selected platelet parameters in pregnancy complicated by FGR and relate them to the severity of
hemodynamic abnormalities. A total of 135 women (pregnant with FGR, with an uncomplicated
pregnancy, and non-pregnant) were enrolled to study different platelet parameters: count (PLT), mean
volume (MPV), ROS levels, intracellular oxygen level, oxygen consumption, and aggregation indices.
No abnormalities in PLT and MPV were found in the FGR group, although it revealed increased ROS
levels in platelets, lower platelet oxygen consumption, and intraplatelet deprivation. Aggregation
parameters were similar as in uncomplicated pregnancy. No significant relationships were observed
between hemodynamic abnormalities and the studied parameters. Platelets in pregnancies compli-
cated by FGR may reveal an impaired oxidative metabolism, which may, in turn, lead to oxidative
stress and, consequently, to an impaired platelet function. This study adds to the understanding of
the role of platelets in the etiology of FGR.

Cytowania

  • 6

    CrossRef

  • 0

    Web of Science

  • 6

    Scopus

Cytuj jako

Pełna treść

pobierz publikację
pobrano 22 razy
Wersja publikacji
Accepted albo Published Version
Licencja
Creative Commons: CC-BY otwiera się w nowej karcie

Słowa kluczowe

Informacje szczegółowe

Kategoria:
Publikacja w czasopiśmie
Typ:
Publikacja w czasopiśmie
Opublikowano w:
Cells nr 11, strony 1 - 13,
ISSN: 2073-4409
Rok wydania:
2022
DOI:
Cyfrowy identyfikator dokumentu elektronicznego (otwiera się w nowej karcie) 10.3390/cells11040724
Bibliografia: test
  1. Gagnon, R. Placental Insufficiency and Its Consequences. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2003, 11 (Suppl. S1), 99-107. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  2. Figueras, F.; Gratacós, E. Update on the Diagnosis and Classification of Fetal Growth Restriction and Proposal of a Stage-Based Management Protocol. Fetal Diagn. Ther. 2014, 36, 86-98. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  3. American College of Obstetricians and Gynecologists' Committee on Practice Bulletins-Obstetrics and the Society forMaternal- FetalMedicin. ACOG Practice Bulletin No. 204: Fetal Growth Restriction. Obstet. Gynecol. 2019, 133, e97-e109. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  4. Salafia, C.M.; Minior, V.K.; Pezzullo, J.C.; Popek, E.J.; Rosenkrantz, T.S.; Vintzileos, A.M. Intrauterine Growth Restriction in Infants of Less than Thirty-Two Weeks' Gestation: Associated Placental Pathologic Features. Am. J. Obstet. Gynecol. 1995, 173, 1049-1057. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  5. Doppler Studies in Fetal Hypoxemic Hypoxia. Available online: https://sonoworld.com/client/fetus/html/doppler/capitulos- html/chapter_04.htm (accessed on 4 February 2022). otwiera się w nowej karcie
  6. Brosens, I.; Dixon, H.G.; Robertson, W.B. Fetal Growth Retardation and the Arteries of the Placental Bed. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1977, 84, 656-663. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  7. Khong, T.; Wolf, F.D.; Robertson, W.B.; Brosens, I. Inadequate Maternal Vascular Response to Placentation in Pregnancies Complicated by Pre-Eclampsia and by Small-for-Gestational Age Infants. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1986, 93, 1049-1059. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  8. Giles, W.B.; Trudinger, B.J.; Baird, P.J. Fetal Umbilical Artery Flow Velocity Waveforms and Placental Resistance: Pathological Correlation. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1985, 92, 31-38. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  9. Sheppard, B.L.; Bonnar, J. An Ultrastructural Study of Utero-Placental Spiral Arteries in Hypertensive and Normotensive Pregnancy and Fetal Growth Retardation. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1981, 88, 695-705. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  10. Norris, L.A.; Sheppard, B.L.; Burke, G.; Bonnar, J. Platelet Activation in Normotensive and Hypertensive Pregnancies Complicated by Intrauterine Growth Retardation. Br. J. Obstet. Gynaecol. 1994, 101, 209-214. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  11. Burton, G.J.; Jauniaux, E. Pathophysiology of Placental-Derived Fetal Growth Restriction. Am. J. Obstet. Gynecol. 2018, 218, S745-S761. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  12. Ellison, P.T.; Jasienska, G. Constraint, Pathology, and Adaptation: How Can We Tell Them Apart? Am. J. Hum. Biol. 2007, 19, 622-630. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  13. Gardosi, J.; Madurasinghe, V.; Williams, M.; Malik, A.; Francis, A. Maternal and Fetal Risk Factors for Stillbirth: Population Based Study. BMJ 2013, 346, f108. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  14. Klinger, M.H.F.; Jelkmann, W. Role of Blood Platelets in Infection and Inflammation. J. Interferon Cytokine Res. 2002, 22, 913-922. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  15. Sugimura, M.; Kobayashi, T.; Shu, F.; Kanayama, N.; Terao, T. Annexin V Inhibits Phosphatidylserine-Induced Intrauterine Growth Restriction in Mice. Placenta 1999, 20, 555-560. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  16. Gordijn, S.J.; Beune, I.M.; Thilaganathan, B.; Papageorghiou, A.; Baschat, A.A.; Baker, P.N.; Silver, R.M.; Wynia, K.; Ganzevoort, W. Consensus Definition of Fetal Growth Restriction: A Delphi Procedure. Ultrasound Obstet. Gynecol. 2016, 48, 333-339. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  17. Lewandowska, M.; Sajdak, S.; Więckowska, B.; Manevska, N.; Lubiński, J. The Influence of Maternal BMI on Adverse Pregnancy Outcomes in Older Women. Nutrients 2020, 12, 2838. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  18. Komosa, A.; Rzymski, P.; Perek, B.; Ropacka-Lesiak, M.; Lesiak, M.; Siller-Matula, J.M.; Poniedziałek, B. Platelets Redox Balance Assessment: Current Evidence and Methodological Considerations. Vasc. Pharmacol. 2017, 93-95, 6-13. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  19. Gomes, A.; Fernandes, E.; Lima, J.L.F.C. Fluorescence Probes Used for Detection of Reactive Oxygen Species. J. Biochem. Biophys. Methods 2005, 65, 45-80. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  20. Dikalov, S.I.; Harrison, D.G. Methods for Detection of Mitochondrial and Cellular Reactive Oxygen Species. Antioxid. Redox Signal. 2014, 20, 372-382. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  21. Poniedziałek, B.; Nowaczyk, J.; Ropacka-Lesiak, M.; Niedzielski, P.; Komosa, A.; Pańczak, K.; Rzymski, P. The Altered Platelet Mineral Ratios in Pregnancy Complicated with Intrauterine Growth Restriction. Reprod. Toxicol. 2018, 76, 46-52. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  22. Barker, D.J.; Osmond, C.; Law, C.M. The Intrauterine and Early Postnatal Origins of Cardiovascular Disease and Chronic Bronchitis. J. Epidemiol. Community Health 1989, 43, 237-240. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  23. de Jong, M.; Cranendonk, A.; van Weissenbruch, M.M. Components of the Metabolic Syndrome in Early Childhood in Very-Low- Birth-Weight Infants and Term Small and Appropriate for Gestational Age Infants. Pediatr. Res. 2015, 78, 457-461. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  24. Kesavan, K.; Devaskar, S.U. Intrauterine Growth Restriction: Postnatal Monitoring and Outcomes. Pediatr. Clin. N. Am. 2019, 66, 403-423. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  25. Schoots, M.H.; Gordijn, S.J.; Scherjon, S.A.; van Goor, H.; Hillebrands, J.-L. Oxidative Stress in Placental Pathology. Placenta 2018, 69, 153-161. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  26. Burton, G.J.; Jauniaux, E. Oxidative Stress. Best Pract. Res. Clin. Obstet. Gynaecol. 2011, 25, 287-299. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  27. Theilen, L.H.; Campbell, H.D.; Mumford, S.L.; Purdue-Smithe, A.C.; Sjaarda, L.A.; Perkins, N.J.; Radoc, J.G.; Silver, R.M.; Schisterman, E.F. Platelet Activation and Placenta-Mediated Adverse Pregnancy Outcomes: An Ancillary Study to the Effects of Aspirin in Gestation and Reproduction Trial. Am. J. Obstet. Gynecol. 2020, 223, 741.e1-741.e12. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  28. Krötz, F.; Sohn, H.-Y.; Pohl, U. Reactive Oxygen Species: Players in the Platelet Game. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2004, 24, 1988-1996. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  29. Wachowicz, B.; Olas, B.; Zbikowska, H.M.; Buczyński, A. Generation of Reactive Oxygen Species in Blood Platelets. Platelets 2002, 13, 175-182. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  30. Pratico, D.; Iuliano, L.; Pulcinelli, F.M.; Bonavita, M.S.; Gazzaniga, P.P.; Violi, F. Hydrogen Peroxide Triggers Activation of Human Platelets Selectively Exposed to Nonaggregating Concentrations of Arachidonic Acid and Collagen. J. Lab. Clin. Med. 1992, 119, 364-370.
  31. Irani, K.; Pham, Y.; Coleman, L.D.; Roos, C.; Cooke, G.E.; Miodovnik, A.; Karim, N.; Wilhide, C.C.; Bray, P.F.; Goldschmidt- Clermont, P.J. Priming of Platelet AlphaIIbbeta3 by Oxidants Is Associated with Tyrosine Phosphorylation of Beta3. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 1998, 18, 1698-1706. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  32. Leo, R.; Praticò, D.; Iuliano, L.; Pulcinelli, F.M.; Ghiselli, A.; Pignatelli, P.; Colavita, A.R.; FitzGerald, G.A.; Violi, F. Platelet Activation by Superoxide Anion and Hydroxyl Radicals Intrinsically Generated by Platelets That Had Undergone Anoxia and Then Reoxygenated. Circulation 1997, 95, 885-891. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  33. Yamagishi, S.I.; Edelstein, D.; Du, X.L.; Brownlee, M. Hyperglycemia Potentiates Collagen-Induced Platelet Activation through Mitochondrial Superoxide Overproduction. Diabetes 2001, 50, 1491-1494. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  34. Krötz, F.; Sohn, H.Y.; Gloe, T.; Zahler, S.; Riexinger, T.; Schiele, T.M.; Becker, B.F.; Theisen, K.; Klauss, V.; Pohl, U. NAD(P)H Oxidase-Dependent Platelet Superoxide Anion Release Increases Platelet Recruitment. Blood 2002, 100, 917-924. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  35. Clutton, P.; Miermont, A.; Freedman, J.E. Regulation of Endogenous Reactive Oxygen Species in Platelets Can Reverse Aggrega- tion. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2004, 24, 187-192. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  36. Oparka, M.; Walczak, J.; Malinska, D.; van Oppen, L.M.P.E.; Szczepanowska, J.; Koopman, W.J.H.; Wieckowski, M.R. Quantifying ROS Levels Using CM-H2DCFDA and HyPer. Methods 2016, 109, 3-11. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  37. Ravera, S.; Panfoli, I. Platelet Aerobic Metabolism: New Perspectives. J. Unexplor. Med. Data 2019, 2019, 7. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  38. Perry, C.G.R.; Kane, D.A.; Lanza, I.R.; Neufer, P.D. Methods for Assessing Mitochondrial Function in Diabetes. Diabetes 2013, 62, 1041-1053. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  39. Dmitriev, R.I.; Zhdanov, A.V.; Jasionek, G.; Papkovsky, D.B. Assessment of Cellular Oxygen Gradients with a Panel of Phospho- rescent Oxygen-Sensitive Probes. Anal. Chem. 2012, 84, 2930-2938. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  40. Somkhit, J.; Loyant, R.; Brenet, A.; Hassan-Abdi, R.; Yanicostas, C.; Porceddu, M.; Borgne-Sanchez, A.; Soussi-Yanicostas, N. A Fast, Simple, and Affordable Technique to Measure Oxygen Consumption in Living Zebrafish Embryos. Zebrafish 2020, 17, 268-270. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  41. Hynes, J.; Marroquin, L.D.; Ogurtsov, V.I.; Christiansen, K.N.; Stevens, G.J.; Papkovsky, D.B.; Will, Y. Investigation of Drug- Induced Mitochondrial Toxicity Using Fluorescence-Based Oxygen-Sensitive Probes. Toxicol. Sci. 2006, 92, 186-200. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  42. Will, Y.; Hynes, J.; Ogurtsov, V.I.; Papkovsky, D.B. Analysis of Mitochondrial Function Using Phosphorescent Oxygen-Sensitive Probes. Nat. Protoc. 2006, 1, 2563-2572. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  43. Kondrashina, A.V.; Ogurtsov, V.I.; Papkovsky, D.B. Comparison of the Three Optical Platforms for Measurement of Cellular Respiration. Anal. Biochem. 2015, 468, 1-3. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  44. Fercher, A.; Borisov, S.M.; Zhdanov, A.V.; Klimant, I.; Papkovsky, D.B. Intracellular O 2 Sensing Probe Based on Cell-Penetrating Phosphorescent Nanoparticles. ACS Nano 2011, 5, 5499-5508. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  45. Fercher, A.; O'Riordan, T.C.; Zhdanov, A.V.; Dmitriev, R.I.; Papkovsky, D.B. Imaging of Cellular Oxygen and Analysis of Metabolic Responses of Mammalian Cells. Methods Mol. Biol. 2010, 591, 257-273. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  46. Rumsey, W.L.; Vanderkooi, J.M.; Wilson, D.F. Imaging of Phosphorescence: A Novel Method for Measuring Oxygen Distribution in Perfused Tissue. Science 1988, 241, 1649-1651. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  47. O'Riordan, T.C.; Fitzgerald, K.; Ponomarev, G.V.; Mackrill, J.; Hynes, J.; Taylor, C.; Papkovsky, D.B. Sensing Intracellular Oxygen Using Near-Infrared Phosphorescent Probes and Live-Cell Fluorescence Imaging. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 2007, 292, R1613-R1620. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  48. Melchinger, H.; Jain, K.; Tyagi, T.; Hwa, J. Role of Platelet Mitochondria: Life in a Nucleus-Free Zone. Front. Cardiovasc. Med. 2019, 6, 153. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  49. Valera, M.-C.; Parant, O.; Vayssiere, C.; Arnal, J.-F.; Payrastre, B. Physiologic and Pathologic Changes of Platelets in Pregnancy. Platelets 2010, 21, 587-595. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  50. Kanat-Pektas, M.; Yesildager, U.; Tuncer, N.; Arioz, D.T.; Nadirgil-Koken, G.; Yilmazer, M. Could Mean Platelet Volume in Late First Trimester of Pregnancy Predict Intrauterine Growth Restriction and Pre-Eclampsia? J. Obstet. Gynaecol. Res. 2014, 40, 1840-1845. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  51. Manten, G.T.R.; Sikkema, M.J.; Voorbij, H.A.M.; Visser, G.H.A.; Bruinse, H.W.; Franx, A. Risk Factors for Cardiovascular Disease in Women with a History of Pregnancy Complicated by Preeclampsia or Intrauterine Growth Restriction. Hypertens. Pregnancy 2007, 26, 39-50. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  52. Bujold, E.; Roberge, S.; Lacasse, Y.; Bureau, M.; Audibert, F.; Marcoux, S.; Forest, J.-C.; Giguère, Y. Prevention of Preeclampsia and Intrauterine Growth Restriction with Aspirin Started in Early Pregnancy: A Meta-Analysis. Obstet. Gynecol. 2010, 116, 402-414. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  53. Blomqvist, L.R.F.; Strandell, A.M.; Baghaei, F.; Hellgren, M.S.E. Platelet Aggregation in Healthy Women during Normal Pregnancy-A Longitudinal Study. Platelets 2019, 30, 438-444. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  54. Can, M.M.; Kaymaz, C.; Can, E.; Tanboga, I.H.; Api, O.; Kars, B.; Ceren Tokgoz, H.; Turkyilmaz, E.; Akgun, T.; Sonmez, K.; et al. Whole Blood Platelet Aggregation Failed to Detect Differences between Preeclampsia and Normal Pregnancy. Platelets 2010, 21, 496-497. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  55. Navaratnam, K.; Alfirevic, A.; Jorgensen, A.; Alfirevic, Z. Aspirin Non-Responsiveness in Pregnant Women at High-Risk of Pre-Eclampsia. Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 2018, 221, 144-150. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  56. Norris, L.A.; Gleeson, N.; Sheppard, B.L.; Bonnar, J. Whole Blood Platelet Aggregation in Moderate and Severe Pre-Eclampsia. BJOG Int. J. Obstet. Gynaecol. 1993, 100, 684-688. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  57. Lam, F.W.; Vijayan, K.V.; Rumbaut, R.E. Platelets and Their Interactions with Other Immune Cells. Compr. Physiol. 2015, 5, 1265-1280. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  58. Tsoupras, A.; Zabetakis, I.; Lordan, R. Platelet Aggregometry Assay for Evaluating the Effects of Platelet Agonists and Antiplatelet Compounds on Platelet Function in Vitro. MethodsX 2019, 6, 63-70. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
Weryfikacja:
Brak weryfikacji

wyświetlono 62 razy

Publikacje, które mogą cię zainteresować

Meta Tagi