The Chitosan-Based System with Scutellariae baicalensis radix Extract for the Local Treatment of Vaginal Infections
Abstrakt
Scutellarie baicalensis radix, as a flavone-rich source, exhibits antibacterial, antifungal, an-
tioxidant, and anti-inflammatory activity. It may be used as a therapeutic agent to treat various
diseases, including vaginal infections. In this study, six binary mixtures of chitosan with stable
S. baicalensis radix lyophilized extract were obtained and identified by spectral (ATR-FTIR, XRPD)
and thermal (TG and DSC) methods. The changes in dissolution rates of active compounds and
the significant increase in the biological properties towards metal chelating activity were observed,
as well as the inhibition of hyaluronic acid degradation after mixing plant extract with chitosan.
Moreover, the combination of S. baicalensis radix lyophilized extract with a carrier allowed us to obtain
the binary systems with a higher antifungal activity than the pure extract, which may be effective in
developing new strategies in the vaginal infections treatment, particularly vulvovaginal candidiasis.
Cytowania
-
8
CrossRef
-
0
Web of Science
-
6
Scopus
Autorzy (6)
Cytuj jako
Pełna treść
- Wersja publikacji
- Submitted Version
- Licencja
- otwiera się w nowej karcie
Słowa kluczowe
Informacje szczegółowe
- Kategoria:
- Publikacja w czasopiśmie
- Typ:
- Publikacja w czasopiśmie
- Opublikowano w:
-
Pharmaceutics
nr 14,
wydanie 4,
ISSN: 1999-4923 - ISSN:
- 1999-4923
- Rok wydania:
- 2022
- DOI:
- Cyfrowy identyfikator dokumentu elektronicznego (otwiera się w nowej karcie) 10.3390/pharmaceutics14040740
- Bibliografia: test
-
- Abdul-Aziz, M.; Mahdy, M.A.K.; Abdul-Ghani, R.; Alhilali, N.A.; Al-Mujahed, L.K.A.; Alabsi, S.A.; Al-Shawish, F.A.M.; Alsarari, N.J.M.; Bamashmos, W.; Abdulwali, S.J.H.; et al. Bacterial Vaginosis, Vulvovaginal Candidiasis and Trichomonal Vaginitis among Reproductive-Aged Women Seeking Primary Healthcare in Sana'a City, Yemen. BMC Infect. Dis. 2019, 19, 879. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Ya, W.; Reifer, C.; Miller, L.E. Efficacy of Vaginal Probiotic Capsules for Recurrent Bacterial Vaginosis: A Double-Blind, Random- ized, Placebo-Controlled Study. Am. J. Obstet. Gynecol. 2010, 203, 120.e1-120.e6. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Bitew, A.; Abebaw, Y.; Bekele, D.; Mihret, A. Prevalence of Bacterial Vaginosis and Associated Risk Factors among Women Complaining of Genital Tract Infection. Int. J. Microbiol. 2017, 2017, 4919404. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Kovachev, S. Defence Factors of Vaginal Lactobacilli. Crit. Rev. Microbiol. 2018, 44, 31-39. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Zeng, X.; Zhang, Y.; Zhang, T.; Xue, Y.; Xu, H.; An, R. Risk Factors of Vulvovaginal Candidiasis among Women of Reproductive Age in Xi'an: A Cross-Sectional Study. BioMed Res. Int. 2018, 2018, e9703754. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Gonçalves, B.; Ferreira, C.; Alves, C.T.; Henriques, M.; Azeredo, J.; Silva, S. Vulvovaginal Candidiasis: Epidemiology, Microbiology and Risk Factors. Crit. Rev. Microbiol. 2016, 42, 905-927. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Jones, A. Bacterial Vaginosis: A Review of Treatment, Recurrence, and Disparities. J. Nurse Pract. 2019, 15, 420-423. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Ravel, J.; Moreno, I.; Simón, C. Bacterial Vaginosis and Its Association with Infertility, Endometritis, and Pelvic Inflammatory Disease. Am. J. Obstet. Gynecol. 2021, 224, 251-257. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Soper, D.E. Bacterial Vaginosis and Surgical Site Infections. Am. J. Obstet. Gynecol. 2020, 222, 219-223. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Faught, B.M.; Reyes, S. Characterization and Treatment of Recurrent Bacterial Vaginosis. J. Women's Health 2019, 28, 1218-1226. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Bradshaw, C.S.; Sobel, J.D. Current Treatment of Bacterial Vaginosis-Limitations and Need for Innovation. J. Infect. Dis. 2016, 214, S14-S20. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Rosati, D.; Bruno, M.; Jaeger, M.; Ten Oever, J.; Netea, M.G. Recurrent Vulvovaginal Candidiasis: An Immunological Perspective. Microorganisms 2020, 8, 144. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Muzny, C.A.; Schwebke, J.R. Biofilms: An Underappreciated Mechanism of Treatment Failure and Recurrence in Vaginal Infections. Clin. Infect. Dis. 2015, 61, 601-606. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Vodstrcil, L.A.; Muzny, C.A.; Plummer, E.L.; Sobel, J.D.; Bradshaw, C.S. Bacterial Vaginosis: Drivers of Recurrence and Challenges and Opportunities in Partner Treatment. BMC Med. 2021, 19, 194. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Khatoon, Z.; McTiernan, C.D.; Suuronen, E.J.; Mah, T.-F.; Alarcon, E.I. Bacterial Biofilm Formation on Implantable Devices and Approaches to Its Treatment and Prevention. Heliyon 2018, 4, e01067. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Costa, O.Y.A.; Raaijmakers, J.M.; Kuramae, E.E. Microbial Extracellular Polymeric Substances: Ecological Function and Impact on Soil Aggregation. Front. Microbiol. 2018, 9, 1636. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Gebreyohannes, G.; Nyerere, A.; Bii, C.; Sbhatu, D.B. Challenges of Intervention, Treatment, and Antibiotic Resistance of Biofilm-Forming Microorganisms. Heliyon 2019, 5, e02192. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Samrot, A.V.; Abubakar Mohamed, A.; Faradjeva, E.; Si Jie, L.; Hooi Sze, C.; Arif, A.; Chuan Sean, T.; Norbert Michael, E.; Yeok Mun, C.; Xiao Qi, N.; et al. Mechanisms and Impact of Biofilms and Targeting of Biofilms Using Bioactive Compounds-A Review. Medicina 2021, 57, 839. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Algburi, A.; Comito, N.; Kashtanov, D.; Dicks, L.M.T.; Chikindas, M.L. Control of Biofilm Formation: Antibiotics and Beyond. Appl. Environ. Microbiol. 2017, 83, e02508-16. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Sharma, D.; Misba, L.; Khan, A.U. Antibiotics versus Biofilm: An Emerging Battleground in Microbial Communities. Antimicrob. Resist. Infect. Control 2019, 8, 76. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Patterson, J.L.; Girerd, P.H.; Karjane, N.W.; Jefferson, K.K. Effect of Biofilm Phenotype on Resistance of Gardnerella Vaginalis to Hydrogen Peroxide and Lactic Acid. Am. J. Obs. Gynecol. 2007, 197, 170.e1-170.e7. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Mashburn, J. Vaginal Infections Update. J. Midwifery Women's Health 2012, 57, 629-634. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Masevhe, N.A.; McGaw, L.J.; Eloff, J.N. The Traditional Use of Plants to Manage Candidiasis and Related Infections in Venda, South Africa. J. Ethnopharmacol. 2015, 168, 364-372. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Pharmaceutics 2022, 14, 740 19 of 23 otwiera się w nowej karcie
- de Oliveira Santos, G.C.; Vasconcelos, C.C.; Lopes, A.J.O.; de Sousa Cartágenes, M.D.S.; Filho, A.K.D.B.; do Nascimento, F.R.F.; Ramos, R.M.; Pires, E.R.R.B.; de Andrade, M.S.; Rocha, F.M.G.; et al. Candida Infections and Therapeutic Strategies: Mechanisms of Action for Traditional and Alternative Agents. Front. Microbiol. 2018, 9, 1351. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Najafi, M.N.; Rezaee, R.; Najafi, N.N.; Mirzaee, F.; Burykina, T.I.; Lupuliasa, D.; Arsene, A.L.; Ghazanfarpour, M. Herbal Medicines against Bacterial Vaginosis in Women of Reproductive Age: A Systematic Review. Farmacia 2019, 67, 931-940. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Saffari, E.; Mohammad-Alizadeh-Charandabi, S.; Adibpour, M.; Mirghafourvand, M.; Javadzadeh, Y. Comparing the Effects of Calendula Officinalis and Clotrimazole on Vaginal Candidiasis: A Randomized Controlled Trial. Women Health 2017, 57,1145-1160. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Durić, K.; Kovčić Hadžiabdić, S.; Durić, M.; Nikšić, H.; Uzunović, A.; DžudževićČančar, H. Efficacy and Safety of Three Plant Extracts Based Formulations of Vagitories in the Treatment of Vaginitis: A Randomized Controlled Trial. Med. Glas. 2021, 18, 47-54. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Cho, J.-H.; Jang, J.-B.; Lee, K.-S.; Kim, K.-J. Antibiotic Effect of Heat-Clearing Medicinals on Vaginal Microorganisms. J. Korean Obstet. Gynecol. 2006, 19, 175-190.
- Da, X.; Nishiyama, Y.; Tie, D.; Hein, K.Z.; Yamamoto, O.; Morita, E. Antifungal Activity and Mechanism of Action of Ou-Gon (Scutellaria Root Extract) Components against Pathogenic Fungi. Sci. Rep. 2019, 9, 1683. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Bochořáková, H.; Paulová, H.; Slanina, J.; Musil, P.; Táborská, E. Main Flavonoids in the Root of Scutellaria Baicalensis Cultivated in Europe and Their Comparative Antiradical Properties. Phytother. Res. 2003, 17, 640-644. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Hao, H.; Aixia, Y.; Dan, L.; Lei, F.; Nancai, Y.; Wen, S. Baicalin Suppresses Expression of Chlamydia Protease-like Activity Factor in Hep-2 Cells Infected by Chlamydia Trachomatis. Fitoterapia 2009, 7, 448-452. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Wakabayashi, I. Inhibitory Effects of Baicalein and Wogonin on Lipopolysaccharide-Induced Nitric Oxide Production in Macrophages. Pharmacol. Toxicol. 1999, 84, 288-291. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Piao, H.Z.; Jin, S.A.; Chun, H.S.; Lee, J.-C.; Kim, W.-K. Neuroprotective Effect of Wogonin: Potential Roles of Inflammatory Cytokines. Arch. Pharm. Res. 2004, 27, 930. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Kim, D.H.; Kim, H.K.; Park, S.; Kim, J.Y.; Zou, Y.; Cho, K.H.; Kim, Y.S.; Kim, D.H.; Yu, B.P.; Choi, J.S.; et al. Short-Term Feeding of Baicalin Inhibits Age-Associated NF-KB Activation. Mech. Ageing Dev. 2006, 127, 719-725. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Hsieh, C.-J.; Hall, K.; Ha, T.; Li, C.; Krishnaswamy, G.; Chi, D.S. Baicalein Inhibits IL-1β-and TNF-α-Induced Inflammatory Cytokine Production from Human Mast Cells via Regulation of the NF-KB Pathway. Clin. Mol. Allergy 2007, 5, 5. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Lixuan, Z.; Jingcheng, D.; Wenqin, Y.; Jianhua, H.; Baojun, L.; Xiaotao, F. Baicalin Attenuates Inflammation by Inhibiting NF-KB Activation in Cigarette Smoke Induced Inflammatory Models. Pulm. Pharmacol. Ther. 2010, 23, 411-419. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Tsai, C.-L.; Lin, Y.-C.; Wang, H.-M.; Chou, T.-C. Baicalein, an Active Component of Scutellaria Baicalensis, Protects against Lipopolysaccharide-Induced Acute Lung Injury in Rats. J. Ethnopharmacol. 2014, 153, 197-206. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Mladěnka, P.; Macáková, K.; Filipský, T.; Zatloukalová, L.; Jahodář, L.; Bovicelli, P.; Silvestri, I.P.; Hrdina, R.; Saso, L. In Vitro Analysis of Iron Chelating Activity of Flavonoids. J. Inorg. Biochem. 2011, 105, 693-701. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Zhao, Y.; Li, H.; Gao, Z.; Xu, H. Effects of Dietary Baicalin Supplementation on Iron Overload-Induced Mouse Liver Oxidative Injury. Eur. J. Pharm. 2005, 509, 195-200. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Treml, J.; Šmejkal, K. Flavonoids as Potent Scavengers of Hydroxyl Radicals. Compr. Rev. Food Sci. Food Saf. 2016, 15, 720-738. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Oh, E.; Andrews, K.J.; Jeon, B. Enhanced Biofilm Formation by Ferrous and Ferric Iron through Oxidative Stress in Campylobacter Jejuni. Front. Microbiol. 2018, 9, 1204. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Chen, T.; Dong, G.; Zhang, S.; Zhang, X.; Zhao, Y.; Cao, J.; Zhou, T.; Wu, Q. Effects of Iron on the Growth, Biofilm Formation and Virulence of Klebsiella Pneumoniae Causing Liver Abscess. BMC Microbiol. 2020, 20, 36. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Banin, E.; Vasil, M.L.; Greenberg, E.P. Iron and Pseudomonas Aeruginosa Biofilm Formation. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 2005, 102, 11076-11081. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Lin, M.-H.; Shu, J.-C.; Huang, H.-Y.; Cheng, Y.-C. Involvement of Iron in Biofilm Formation by Staphylococcus Aureus. PLoS ONE 2012, 7, e34388. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Page, M.G.P. The Role of Iron and Siderophores in Infection, and the Development of Siderophore Antibiotics. Clin. Infect Dis. 2019, 69, S529-S537. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Tiwari, S.; Bahadur, P. Modified Hyaluronic Acid Based Materials for Biomedical Applications. Int. J. Biol. Macromol. 2019, 121, 556-571. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Dovedytis, M.; Liu, Z.J.; Bartlett, S. Hyaluronic Acid and Its Biomedical Applications: A Review. Eng. Regen. 2020, 1, 102-113. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Graça, M.F.P.; Miguel, S.P.; Cabral, C.S.D.; Correia, I.J. Hyaluronic Acid-Based Wound Dressings: A Review. Carbohydr. Polym. 2020, 241, 116364. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Sato, H.; Takahashi, T.; Ide, H.; Fukushima, T.; Tabata, M.; Sekine, F.; Kobayashi, K.; Negishi, M.; Niwa, Y. Antioxidant Activity of Synovial Fluid, Hyaluronic Acid, and Two Subcomponents of Hyaluronic Acid. Synovial Fluid Scavenging Effect Is Enhanced in Rheumatoid Arthritis Patients. Arthritis Rheum. 1988, 31, 63-71. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Romanò, C.L.; De Vecchi, E.; Bortolin, M.; Morelli, I.; Drago, L. Hyaluronic Acid and Its Composites as a Local Antimicro- bial/Antiadhesive Barrier. J. Bone Jt. Infect. 2017, 2, 63-72. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Pharmaceutics 2022, 14, 740 20 of 23 otwiera się w nowej karcie
- Delia, P.; Sansotta, G.; Pontoriero, A.; Iati, G.; De Salvo, S.; Pisana, M.; Potami, A.; Lopes, S.; Messina, G.; Pergolizzi, S. Clinical Evaluation of Low-Molecular-Weight Hyaluronic Acid-Based Treatment on Onset of Acute Side Effects in Women Receiving Adjuvant Radiotherapy after Cervical Surgery: A Randomized Clinical Trial. ORT 2019, 42, 212-218. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Gustavino, C.; Sala, P.; Cusini, N.; Gravina, B.; Ronzini, C.; Marcolin, D.; Vellone, V.G.; Paudice, M.; Nappi, R.; Costantini, S.; et al. Efficacy and Safety of Prolonged-Release Hyaluronic Acid Derivative Vaginal Application in the Postpartum Period: A Prospective Randomised Clinical Trial. Ann. Med. 2021, 53, 1589-1597. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- dos Santos, C.C.M.; Uggioni, M.L.R.; Colonetti, T.; Colonetti, L.; Grande, A.J.; Da Rosa, M.I. Hyaluronic Acid in Postmenopause Vaginal Atrophy: A Systematic Review. J. Sex. Med. 2021, 18, 156-166. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Fini, A.; Orienti, I. The Role of Chitosan in Drug Delivery. Am. J. Drug Deliv. 2003, 1, 43-59. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Peña, A.; Sánchez, N.S.; Calahorra, M. Effects of Chitosan on Candida Albicans: Conditions for Its Antifungal Activity. BioMed Res. Int. 2013, 2013, e527549. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Ahmed, S.; Ikram, S. Chitosan Based Scaffolds and Their Applications in Wound Healing. Achiev. Life Sci. 2016, 10, 27-37. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Li, J.; Zhuang, S. Antibacterial Activity of Chitosan and Its Derivatives and Their Interaction Mechanism with Bacteria: Current State and Perspectives. Eur. Polym. J. 2020, 138, 109984. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Qin, Y.; Li, P.; Guo, Z. Cationic Chitosan Derivatives as Potential Antifungals: A Review of Structural Optimization and Applications. Carbohydr. Polym. 2020, 236, 116002. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Ke, C.-L.; Deng, F.-S.; Chuang, C.-Y.; Lin, C.-H. Antimicrobial Actions and Applications of Chitosan. Polymers 2021, 13, 904. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Araujo, V.H.S.; de Souza, M.P.C.; Carvalho, G.C.; Duarte, J.L.; Chorilli, M. Chitosan-Based Systems Aimed at Local Application for Vaginal Infections. Carbohydr. Polym. 2021, 261, 117919. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Ways, T.M.; Lau, W.M.; Khutoryanskiy, V.V. Chitosan and Its Derivatives for Application in Mucoadhesive Drug Delivery Systems. Polymers 2018, 10, 267. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Portero, A.; Remuñán-López, C.; Vila-Jato, J.L. Effect of Chitosan and Chitosan Glutamate Enhancing the Dissolution Properties of the Poorly Water Soluble Drug Nifedipine. Int. J. Pharm. 1998, 175, 75-84. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Yeh, T.-H.; Hsu, L.-W.; Tseng, M.T.; Lee, P.-L.; Sonjae, K.; Ho, Y.-C.; Sung, H.-W. Mechanism and Consequence of Chitosan- Mediated Reversible Epithelial Tight Junction Opening. Biomaterials 2011, 32, 6164-6173. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Chanaj-Kaczmarek, J.; Osmałek, T.; Szymańska, E.; Winnicka, K.; Karpiński, T.M.; Dyba, M.; Bekalarska-Dębek, M.; Cielecka- Piontek, J. Development and Evaluation of Thermosensitive Hydrogels with Binary Mixture of Scutellariae Baicalensis Radix Extract and Chitosan for Periodontal Diseases Treatment. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 11319. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- ICH. Stability Testing Guidelines: Stability Testing of New Drug Substances and Products; ICH Steering Committee: Geneva, Switzer- land, 2003. Available online: https://www.ema.europa.eu/en/ich-q1a-r2-stability-testing-new-drug-substances-drug-products (accessed on 14 February 2022).
- Frisch, M.J.; Trucks, G.W.; Schlegel, H.B.; Scuseria, G.; Robb, M.; Cheeseman, J.; Scalmani, G.; Barone, V.; Mennucci, B.; Petersson, G. Gaussian 09, Revision C. 01, Gaussian, Inc., Wallingford CT, 2009 Search PubMed;(b) Y. Zhao and DG Truhlar. Theor. Chem. Acc. 2008, 120, 215.
- Dennington, R.; Keith, T.; Millam, J. GaussView; Version 5; otwiera się w nowej karcie
- Semichem Inc.: Shawnee Mission, KS, USA, 2009.
- Owen, D.H.; Katz, D.F. A Vaginal Fluid Simulant. Contraception 1999, 59, 91-95. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Dissolution test for solid dosage forms. In European Pharmacopoeia, 10th ed.; Council of Europe: Strasbourg, France, 2020; Chapter 2.9.3. otwiera się w nowej karcie
- Moore, J.W.; Flanner, H.H. Mathematical Comparison of Dissolution Profiles. Pharm. Technol. 1996, 20, 64-75.
- Dinis, T.C.; Maderia, V.M.; Almeida, L.M. Action of Phenolic Derivatives (Acetaminophen, Salicylate, and 5-Aminosalicylate) as Inhibitors of Membrane Lipid Peroxidation and as Peroxyl Radical Scavengers. Arch. Biochem. Biophys. 1994, 315, 161-169. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Studzińska-Sroka, E.; Dudek-Makuch, M.; Chanaj-Kaczmarek, J.; Czepulis, N.; Korybalska, K.; Rutkowski, R.; Łuczak, J.; Grabowska, K.; Bylka, W.; Witowski, J. Anti-Inflammatory Activity and Phytochemical Profile of Galinsoga Parviflora Cav. Molecules 2018, 23, 2133. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Feng, Z.; Zhou, J.; Shang, X.; Kuang, G.; Han, J.; Lu, L.; Zhang, L. Comparative Research on Stability of Baicalin and Baicalein Administrated in Monomer and Total Flavonoid Fraction Form of Radix Scutellariae in Biological Fluids in Vitro. Pharm. Biol. 2017, 55, 1177-1184. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- DeNoyer, L.K.; Dodd, J.G. Smoothing and Derivatives in Spectroscopy. In Handbook of Vibrational Spectroscopy; otwiera się w nowej karcie
- John Wiley & Sons, Ltd.: Hoboken, NJ, USA, 2006. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Xu, C.-H.; Liu, S.-L.; Zhao, S.-N.; Li, S.-Z.; Sun, S.-Q. Unveiling Ontogenesis of Herbal Medicine in Plant Chemical Profiles by Infrared Macro-Fingerprinting. Planta Med. 2013, 79, 1068-1076. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Sip, S.; Paczkowska-Walendowska, M.; Rosiak, N.; Miklaszewski, A.; Grabańska-Martyńska, K.; Samarzewska, K.; Cielecka- Piontek, J. Chitosan as Valuable Excipient for Oral and Topical Carvedilol Delivery Systems. Pharmaceuticals 2021, 14, 712. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Ding, X.; Gao, H.; Guo, X.; Wang, Z.; Yang, L.; Guan, Y.; Shi, J. Analysis of the 4th generation Scutellaria baicalensis Georgi with space mutagenesis via FTIR spectroscopy. Guang Pu Xue Yu Guang Pu Fen Xi 2009, 29, 1286-1288.
- Zhang, C.; Zhang, G.; Sun, S.; Tu, Y. Study on the identification of radix scutellariae and extract using Fourier transform infrared spectroscopy and two-dimensional IR correlation spectroscopy. Guang Pu Xue Yu Guang Pu Fen Xi 2010, 30, 1774-1779. [PubMed]
- Dennis, G.; Harrison, W.; Agnes, K.; Erastus, G. Effect of Biological Control Antagonists Adsorbed on Chitosan Immobilized Silica Nanocomposite on Ralstonia Solanacearum and Growth of Tomato Seedlings. Adv. Res. 2016, 6, 1-23. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Thamilarasan, V.; Sethuraman, V.; Gopinath, K.; Balalakshmi, C.; Govindarajan, M.; Mothana, R.; Siddiqui, N.; Khaled, J.; Benelli, G. Single Step Fabrication of Chitosan Nanocrystals Using Penaeus Semisulcatus: Potential as New Insecticides, Antimicrobials and Plant Growth Promoters. J. Clust. Sci. 2018, 29, 375-384. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Zhao, L.; Duan, X.; Cao, W.; Ren, X.; Ren, G.; Liu, P.; Chen, J. Effects of Different Drying Methods on the Characterization, Dissolution Rate and Antioxidant Activity of Ursolic Acid-Loaded Chitosan Nanoparticles. Foods 2021, 10, 2470. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Neto, C.G.T.; Giacometti, J.A.; Job, A.E.; Ferreira, F.C.; Fonseca, J.L.C.; Pereira, M.R. Thermal Analysis of Chitosan Based Networks. Carbohydr. Polym. 2005, 62, 97-103. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Dey, S.; Al-Amin, M.; Rashid, T.; Sultan, Z.; Ashaduzzaman, M.; Sarker, M.; Shamsuddin, S. Preparation, Characterization and Performance Evaluation Of Chitosan As An Adsorbent For Remazol Red. Int. J. Latest Res. Eng. Technol. 2016, 2, 52-62. otwiera się w nowej karcie
- Liao, S.-K.; Hung, C.-C.; Lim, M.-F. A Kinetic Study of Thermal Degradations of Chitosan/Polycaprolactam Blends. Macromol. Res. 2004, 12, 466-473. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Perinelli, D.R.; Campana, R.; Skouras, A.; Bonacucina, G.; Cespi, M.; Mastrotto, F.; Baffone, W.; Casettari, L. Chitosan Loaded into a Hydrogel Delivery System as a Strategy to Treat Vaginal Co-Infection. Pharmaceutics 2018, 10, 23. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Cirri, M.; Maestrelli, F.; Scuota, S.; Bazzucchi, V.; Mura, P. Development and Microbiological Evaluation of Chitosan and Chitosan-Alginate Microspheres for Vaginal Administration of Metronidazole. Int. J. Pharm. 2021, 598, 120375. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Rizwan, M.; Yahya, R.; Hassan, A.; Yar, M.; Azzahari, A.D.; Selvanathan, V.; Sonsudin, F.; Abouloula, C.N. PH Sensitive Hydrogels in Drug Delivery: Brief History, Properties, Swelling, and Release Mechanism, Material Selection and Applications. Polymers 2017, 9, 137. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Agnihotri, S.A.; Aminabhavi, T.M. Controlled Release of Clozapine through Chitosan Microparticles Prepared by a Novel Method. J. Control. Release 2004, 96, 245-259. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Finnegan, S.; Percival, S.L. EDTA: An Antimicrobial and Antibiofilm Agent for Use in Wound Care. Adv. Wound Care 2015, 4, 415-421. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Percival, S.L.; Salisbury, A.-M. The Efficacy of Tetrasodium EDTA on Biofilms. In Advances in Microbiology, Infectious Diseases and Public Health: Volume 9; Donelli, G., Ed.; Advances in Experimental Medicine and Biology; Springer International Publishing: Cham, Switzerland, 2018; pp. 101-110. ISBN 978-3-319-79017-6. otwiera się w nowej karcie
- Lefebvre, E.; Vighetto, C.; Di Martino, P.; Larreta Garde, V.; Seyer, D. Synergistic Antibiofilm Efficacy of Various Commercial Antiseptics, Enzymes and EDTA: A Study of Pseudomonas Aeruginosa and Staphylococcus Aureus Biofilms. Int. J. Antimicrob. Agents 2016, 48, 181-188. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Raad, I.; Chatzinikolaou, I.; Chaiban, G.; Hanna, H.; Hachem, R.; Dvorak, T.; Cook, G.; Costerton, W. In Vitro and Ex Vivo Activities of Minocycline and EDTA against Microorganisms Embedded in Biofilm on Catheter Surfaces. Antimicrob. Agents Chemother. 2003, 47, 3580-3585. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Roy, R.; Tiwari, M.; Donelli, G.; Tiwari, V. Strategies for Combating Bacterial Biofilms: A Focus on Anti-Biofilm Agents and Their Mechanisms of Action. Virulence 2018, 9, 522-554. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Silva-Dias, A.; Palmeira-de-Oliveira, A.; Miranda, I.M.; Branco, J.; Cobrado, L.; Monteiro-Soares, M.; Queiroz, J.A.; Pina-Vaz, C.; Rodrigues, A.G. Anti-Biofilm Activity of Low-Molecular Weight Chitosan Hydrogel against Candida Species. Med. Microbiol. Immunol. 2014, 203, 25-33. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Felipe, V.; Breser, M.L.; Bohl, L.P.; Rodrigues da Silva, E.; Morgante, C.A.; Correa, S.G.; Porporatto, C. Chitosan Disrupts Biofilm Formation and Promotes Biofilm Eradication in Staphylococcus Species Isolated from Bovine Mastitis. Int. J. Biol. Macromol. 2019, 126, 60-67. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Litwiniuk, M.; Krejner, A.; Speyrer, M.S.; Gauto, A.R.; Grzela, T. Hyaluronic Acid in Inflammation and Tissue Regeneration. Wounds 2016, 28, 78-88.
- Altman, R.; Bedi, A.; Manjoo, A.; Niazi, F.; Shaw, P.; Mease, P. Anti-Inflammatory Effects of Intra-Articular Hyaluronic Acid: A Systematic Review. Cartilage 2019, 10, 43-52. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Shanmugam, A.; Subhapradha, N.; Suman, S.; Ramasamy, P.; Ramachandran, S.; Shanmugam, V.; Srinivasan, A. Characterization of Biopolymer "Chitosan" from the Shell of Donacid Clam Donax Scortum (Linnaeus, 1758) and Its Antioxidant Activity. Int. J. Pharm. Pharm. Sci. 2012, 4, 460-465. otwiera się w nowej karcie
- Chandrasekharan, A.; Hwang, Y.J.; Seong, K.-Y.; Park, S.; Kim, S.; Yang, S.Y. Acid-Treated Water-Soluble Chitosan Suitable for Microneedle-Assisted Intracutaneous Drug Delivery. Pharmaceutics 2019, 11, 209. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Denuzière, A.; Ferrier, D.; Domard, A. Interactions between Chitosan and Glycosaminoglycans (Chondroitin Sulfate and Hyaluronic Acid): Physicochemical and Biological Studies. Ann. Pharm. Fr. 2000, 58, 47-53. otwiera się w nowej karcie
- Kang, K.; Fong, W.-P.; Tsang, P.W.-K. Antifungal Activity of Baicalein Against Candidakrusei Does Not Involve Apoptosis. Mycopathologia 2010, 170, 391-396. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Serpa, R.; França, E.J.G.; Furlaneto-Maia, L.; Andrade, C.G.T.J.; Diniz, A.; Furlaneto, M.C.Y. 2012 In Vitro Antifungal Activity of the Flavonoid Baicalein against Candida Species. J. Med. Microbiol. 2012, 61, 1704-1708. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Dai, B.-D.; Cao, Y.-Y.; Huang, S.; Xu, Y.-G.; Gao, P.-H.; Wang, Y.; Jiang, Y.-Y. Baicalein Induces Programmed Cell Death in Candida Albicans. J. Microbiol. Biotechnol. 2009, 19, 803-809.
- Cao, Y.; Dai, B.; Wang, Y.; Huang, S.; Xu, Y.; Cao, Y.; Gao, P.; Zhu, Z.; Jiang, Y. In Vitro Activity of Baicalein against Candida Albicans Biofilms. Int. J. Antimicrob. Agents 2008, 32, 73-77. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Huang, S.; Cao, Y.Y.; Dai, B.D.; Sun, X.R.; Zhu, Z.Y.; Cao, Y.B.; Wang, Y.; Gao, P.H.; Jiang, Y.Y. In Vitro Synergism of Fluconazole and Baicalein against Clinical Isolates of Candida Albicans Resistant to Fluconazole. Biol. Pharm. Bull. 2008, 31, 2234-2236. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Fu, Z.; Lu, H.; Zhu, Z.; Yan, L.; Jiang, Y.; Cao, Y. Combination of Baicalein and Amphotericin B Accelerates Candida Albicans Apoptosis. Biol. Pharm. Bull. 2011, 34, 214-218. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Yang, S.; Fu, Y.; Wu, X.; Zhou, Z.; Xu, J.; Zeng, X.; Kuang, N.; Zeng, Y. Baicalin Prevents Candida Albicans Infections via Increasing Its Apoptosis Rate. Biochem. Biophys. Res. Commun. 2014, 451, 36-41. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Chen, K.; Wu, W.; Hou, X.; Yang, Q.; Li, Z. A Review: Antimicrobial Properties of Several Medicinal Plants Widely Used in Traditional Chinese Medicine. Food Qual. Saf. 2021, 5, fyab020. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Chen, Y.; Liu, T.; Wang, K.; Hou, C.; Cai, S.; Huang, Y.; Du, Z.; Huang, H.; Kong, J.; Chen, Y. Baicalein Inhibits Staphylococcus Aureus Biofilm Formation and the Quorum Sensing System In Vitro. PLoS ONE 2016, 11, e0153468. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Borges, S.; Silva, J.; Teixeira, P. The Role of Lactobacilli and Probiotics in Maintaining Vaginal Health. Arch. Gynecol. Obs. 2014, 289, 479-489. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Felt, O.; Carrel, A.; Baehni, P.; Buri, P.; Gurny, R. Chitosan as Tear Substitute: A Wetting Agent Endowed with Antimicrobial Efficacy. J. Ocul. Pharmacol. Ther. 2000, 16, 261-270. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Rabea, E.I.; Badawy, M.E.-T.; Stevens, C.V.; Smagghe, G.; Steurbaut, W. Chitosan as Antimicrobial Agent: Applications and Mode of Action. Biomacromolecules 2003, 4, 1457-1465. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Avadi, M.R.; Sadeghi, A.M.M.; Tahzibi, A.; Bayati, K.; Pouladzadeh, M.; Zohuriaan-Mehr, M.J.; Rafiee-Tehrani, M. Diethylmethyl Chitosan as an Antimicrobial Agent: Synthesis, Characterization and Antibacterial Effects. Eur. Polym. J. 2004, 40, 1355-1361. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Wang, X.; Du, Y.; Fan, L.; Liu, H.; Hu, Y. Chitosan-Metal Complexes as Antimicrobial Agent: Synthesis, Characterization and Structure-Activity Study. Polym. Bull. 2005, 55, 105-113. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Hu, Y.; Du, Y.; Wang, X.; Feng, T. Self-Aggregation of Water-Soluble Chitosan and Solubilization of Thymol as an Antimicrobial Agent. J. Biomed. Mater. Res. A 2009, 90, 874-881. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Raafat, D.; Sahl, H.-G. Chitosan and Its Antimicrobial Potential-a Critical Literature Survey. Microb. Biotechnol. 2009, 2, 186-201. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Gómez-Estaca, J.; López de Lacey, A.; López-Caballero, M.E.; Gómez-Guillén, M.C.; Montero, P. Biodegradable Gelatin-Chitosan Films Incorporated with Essential Oils as Antimicrobial Agents for Fish Preservation. Food Microbiol. 2010, 27, 889-896. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Kong, M.; Chen, X.G.; Xing, K.; Park, H.J. Antimicrobial Properties of Chitosan and Mode of Action: A State of the Art Review. Int. J. Food Microbiol. 2010, 144, 51-63. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Shih, P.-Y.; Liao, Y.-T.; Tseng, Y.-K.; Deng, F.-S.; Lin, C.-H. A Potential Antifungal Effect of Chitosan Against Candida Albicans Is Mediated via the Inhibition of SAGA Complex Component Expression and the Subsequent Alteration of Cell Surface Integrity. Front. Microbiol. 2019, 10, 602. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Lo, W.-H.; Deng, F.-S.; Chang, C.-J.; Lin, C.-H. Synergistic Antifungal Activity of Chitosan with Fluconazole against Candida Albicans, Candida Tropicalis, and Fluconazole-Resistant Strains. Molecules 2020, 25, 5114. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Kraus, D.; Peschel, A. Molecular Mechanisms of Bacterial Resistance to Antimicrobial Peptides. In Antimicrobial Peptides and Human Disease; otwiera się w nowej karcie
- Shafer, W.M., Ed.; Current Topics in Microbiology and Immunology; Springer: Berlin/Heidelberg, Germany, 2006; pp. 231-250. ISBN 978-3-540-29916-5.
- Chen, R.-H.; Domard, A.; Muzzarelli, R.A.A.; Tokura, S.; Wang, D.-M. Advances in Chitin/Chitosan Science and Their Applica- tions. Carbohydr. Polym. 2011, 84, 695. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Rohde, M. The Gram-Positive Bacterial Cell Wall. Microbiol. Spectr. 2019, 7, 7.3.10. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Raafat, D.; von Bargen, K.; Haas, A.; Sahl, H.-G. Insights into the Mode of Action of Chitosan as an Antibacterial Compound. Appl. Environ. Microbiol. 2008, 74, 3764-3773. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Kravanja, G.; Primožič, M.; Knez, Ž.; Leitgeb, M. Chitosan-Based (Nano)Materials for Novel Biomedical Applications. Molecules 2019, 24, 1960. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Atai, Z.; Atai, M.; Amini, J.; Salehi, N. In Vivo Study of Antifungal Effects of Low-Molecular-Weight Chitosan against Candida Albicans. J. Oral Sci. 2017, 59, 425-430. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Palma-Guerrero, J.; Lopez-Jimenez, J.A.; Pérez-Berná, A.J.; Huang, I.-C.; Jansson, H.-B.; Salinas, J.; Villalaín, J.; Read, N.D.; Lopez- Llorca, L.V. Membrane Fluidity Determines Sensitivity of Filamentous Fungi to Chitosan. Mol. Microbiol. 2010, 75, 1021-1032. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Kumariya, R.; Sood, S.K.; Rajput, Y.S.; Saini, N.; Garsa, A.K. Increased Membrane Surface Positive Charge and Altered Membrane Fluidity Leads to Cationic Antimicrobial Peptide Resistance in Enterococcus Faecalis. Biochim. Biophys. Acta 2015, 1848, 1367-1375. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Pharmaceutics 2022, 14, 740 23 of 23 otwiera się w nowej karcie
- Ganan, M.; Lorentzen, S.B.; Aam, B.B.; Eijsink, V.G.H.; Gaustad, P.; Sørlie, M. Antibiotic Saving Effect of Combination Therapy through Synergistic Interactions between Well-Characterized Chito-Oligosaccharides and Commercial Antifungals against Medically Relevant Yeasts. PLoS ONE 2019, 14, e0227098. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
- Goy, R.C.; Morais, S.T.B.; Assis, O.B.G. Evaluation of the Antimicrobial Activity of Chitosan and Its Quaternized Derivative on E. Coli and S. Aureus Growth. Rev. Bras. De Farmacogn. 2016, 26, 122-127. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Wang, L.; Liu, F.; Jiang, Y.; Chai, Z.; Li, P.; Cheng, Y.; Jing, H.; Leng, X. Synergistic Antimicrobial Activities of Natural Essential Oils with Chitosan Films. J. Agric. Food Chem. 2011, 59, 12411-12419. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Kim, J.-H.; Yu, D.; Eom, S.-H.; Kim, S.-H.; Oh, J.; Jung, W.-K.; Kim, Y.-M. Synergistic Antibacterial Effects of Chitosan-Caffeic Acid Conjugate against Antibiotic-Resistant Acne-Related Bacteria. Mar. Drugs 2017, 15, 167. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Etemadi, S.; Barhaghi, M.H.S.; Leylabadlo, H.E.; Memar, M.Y.; Mohammadi, A.B.; Ghotaslou, R. The Synergistic Effect of Turmeric Aqueous Extract and Chitosan against Multidrug-Resistant Bacteria. New Microbes New Infect. 2021, 41, 100861. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
- Weryfikacja:
- Brak weryfikacji
wyświetlono 132 razy
Publikacje, które mogą cię zainteresować
Platelets in fetal growth restriction: role of reactive oxygen species, oxygen metabolism, and aggregation.
- B. Poniedziałek,
- J. Nowaczyk,
- P. Rzymski
- + 2 autorów