Development and evaluation of thermosensitive hydrogels with binary mixture of Scutellariae baicalensis radix extract and chitosan for periodontal diseases treatment. - Publikacja - MOST Wiedzy

Wyszukiwarka

Development and evaluation of thermosensitive hydrogels with binary mixture of Scutellariae baicalensis radix extract and chitosan for periodontal diseases treatment.

Abstrakt

Scutellaria baicalensis root displays anti-inflammatory and antibacterial properties due to the presence of flavonoids, particularly baicalin, baicalein, and wogonin. Our work aimed at developing thermosensitive hydrogels containing a binary mixture of S. baicalensis radix lyophilized extract and chitosan as a novel approach for periodontal diseases treatment. Two types of chitosan were employed in preliminary studies on binary mixtures with S. baicalensis radix lyophilized extract standardized for baicalin, baicalein, and wogonin. Thermosensitive hydrogels were prepared of poloxamer 407, alginate sodium, and cellulose derivatives and evaluated in terms of rheological and mucoadhesive behavior. The presence of chitosan altered the release profile of active compounds but did not affect their in vitro permeation behavior in PAMPA assay. The synergistic effects of S. baicalensis radix lyophilized extract and chitosan toward ferrous ion-chelating activity, inhibition of hyaluronidase, and pathogen growth were observed. The thermosensitive gelling system showed shear-thinning properties, gelation temperature between 25 and 27 °C, and favorable mucoadhesiveness in contact with porcine buccal mucosa, which was enhanced in the presence of a binary mixture of S. baicalensis radix extract and chitosan. The release tests showed that baicalin and baicalein were liberated in a prolonged manner with a fast onset from hydrogel formulations. 

Cytowania

Autor (1)

Cytuj jako

Pełna treść

pobierz publikację
pobrano 64 razy
Wersja publikacji
Submitted Version
Licencja
Creative Commons: CC-BY-NC-ND otwiera się w nowej karcie

Informacje szczegółowe

Kategoria:
Publikacja w czasopiśmie
Typ:
Publikacja w czasopiśmie
Opublikowano w:
INTERNATIONAL JOURNAL OF MOLECULAR SCIENCES nr 22, wydanie 21,
ISSN: 1661-6596
Rok wydania:
2021
DOI:
Cyfrowy identyfikator dokumentu elektronicznego (otwiera się w nowej karcie) https://doi.org/10.3390/ijms222111319
Bibliografia: test
  1. Ara, T.; Nakatani, S.; Kobata, K.; Sogawa, N.; Sogawa, C. The Biological Efficacy of Natural Products against Acute and Chronic Inflammatory Diseases in the Oral Region. Medicines 2018, 5, 122. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  2. Wu, T.; Trevisan, M.; Genco, R.J.; Dorn, J.P.; Falkner, K.L.; Sempos, C.T. Periodontal Disease and Risk of Cerebrovascular Disease: The First National Health and Nutrition Examination Survey and Its Follow-up Study. Arch. Intern. Med. 2000, 160, 2749-2755. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  3. Gross, A.J.; Paskett, K.T.; Cheever, V.J.; Lipsky, M.S. Periodontitis: A Global Disease and the Primary Care Provider's Role. Postgrad. Med. J. 2017, 93, 560-565. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  4. Cardoso, E.M.; Reis, C.; Manzanares-Céspedes, M.C. Chronic Periodontitis, Inflammatory Cytokines, and Interrelationship with Other Chronic Diseases. Postgrad. Med. 2018, 130, 98-104. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  5. Janakiram, C.; Dye, B.A. A Public Health Approach for Prevention of Periodontal Disease. Periodontology 2000 2020, 84, 202-214. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  6. Popova, C.; Dosseva-Panova, V.; Panov, V. Microbiology of Periodontal Diseases. A Review. Biotechnol. Biotechnol. Equip. 2013, 27, 3754-3759. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  7. Akcali, A.; Huck, O.; Tenenbaum, H.; Davideau, J.L.; Buduneli, N. Periodontal Diseases and Stress: A Brief Review. J. Oral Rehabil. 2013, 40, 60-68. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  8. Waddington, R.J.; Moseley, R.; Embery, G. Periodontal Disease Mechanisms: Reactive Oxygen Species: A Potential Role in the Pathogenesis of Periodontal Diseases. Oral Dis. 2000, 6, 138-151. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  9. Graziani, F.; Karapetsa, D.; Alonso, B.; Herrera, D. Nonsurgical and Surgical Treatment of Periodontitis: How Many Options for One Disease? Periodontology 2000 2017, 75, 152-188. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  10. Bernardi, S.; Bianchi, S.; Tomei, A.R.; Continenza, M.A.; Macchiarelli, G. Microbiological and SEM-EDS Evaluation of Titanium Surfaces Exposed to Periodontal Gel: In Vitro Study. Materials 2019, 12, 1448. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  11. Llor, C.; Bjerrum, L. Antimicrobial Resistance: Risk Associated with Antibiotic Overuse and Initiatives to Reduce the Problem. Ther. Adv. Drug Saf. 2014, 5, 229-241. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  12. Bernardi, S.; Anderson, A.; Macchiarelli, G.; Hellwig, E.; Cieplik, F.; Vach, K.; Al-Ahmad, A. Subinhibitory Antibiotic Concentra- tions Enhance Biofilm Formation of Clinical Enterococcus Faecalis Isolates. Antibiotics 2021, 10, 874. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  13. Puranik, M.; Harish, Y.; Anushri, M. Herbs: A Good Alternatives to Current Treatments for Oral Health Problems. Int. J. Adv. Health Sci. 2015, 1, 26-32.
  14. Eid Abdelmagyd, H.A.; Ram Shetty, D.S.; Musa Musleh Al-Ahmari, D.M. Herbal Medicine as Adjunct in Periodontal Therapies- A Review of Clinical Trials in Past Decade. J. Oral. Biol. Craniofac. Res. 2019, 9, 212-217. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  15. Palombo, E.A. Traditional Medicinal Plant Extracts and Natural Products with Activity against Oral Bacteria: Potential Application in the Prevention and Treatment of Oral Diseases. Evid.-Based Complementary Altern. Med. 2011, 2011, enep067. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  16. Zhao, Q.; Chen, X.-Y.; Martin, C. Scutellaria Baicalensis, the Golden Herb from the Garden of Chinese Medicinal Plants. Sci. Bull. 2016, 61, 1391-1398. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  17. Huang, S.; Huang, Q.; Huang, B.; Lu, F. The Effect of Scutellaria Baicalensis Georgi on Immune Response in Mouse Model of Experimental Periodontitis. J. Dent. Sci. 2013, 8, 405-411. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  18. Kim, M.H.; Lee, H.; Choi, Y.Y.; Lee, D.H.; Yang, W.M. Scutellaria Baicalensis Ameliorates the Destruction of Periodontal Ligament via Inhibition of Inflammatory Cytokine Expression. J. Chin. Med Assoc. 2018, 81, 141-146. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  19. Cai, X.; Li, C.; Du, G.; Cao, Z. Protective Effects of Baicalin on Ligature-Induced Periodontitis in Rats. J. Periodontal Res. 2008, 43, 14-21. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  20. Chen, Y.; Wu, Z.-F.; Yang, L.-J. Influence of Baicalin on Alveolar Bone Resorption in Rat Experimental Periodontitis. Sci. Pharm. 2008, 76, 689-698. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  21. Wang, G.; Wu, Z.; Wan, L.; Wang, Q.; Chen, F. Influence of Baicalin on the Expression of Receptor Activator of Nuclear Factor-KB Ligand in Cultured Human Periodontal Ligament Cells. Pharmacology 2006, 77, 71-77. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  22. Pei, Z.; Wang, B.; Zhang, F.; Niu, Z.; Shi, S.; Cannon, R.D.; Mei, L. Response of Human Periodontal Ligament Cells to Baicalin. J. Periodontol. 2014, 85, 1283-1290. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  23. Kunimatsu, R.; Kimura, A.; Tsuka, Y.; Horie, K.; Yoshimi, Y.; Awada, T.; Gunji, H.; Abe, T.; Nakajima, K.; Sakata, S.; et al. Baicalin Inhibits Root Resorption during Tooth Movement in a Rodent Model. Arch. Oral Biol. 2020, 116, 104770. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  24. Li, C.; Cao, Z.; Yang, R.; Shang, Z.; Jin, L.; Cobert, E.F. Effects of baicalin on the expression of pro-MMP-1 and MMP-3 in human gingival fibroblasts and periodontal ligament cells. Zhonghua Kou Qiang Yi Xue Za Zhi 2004, 39, 197-200.
  25. Zhu, G.; Li, C.; Cao, Z. Inhibitory Effect of Flavonoid Baicalin on Degranulation of Human Polymorphonuclear Leukocytes Induced by Interleukin-8: Potential Role in Periodontal Diseases. J. Ethnopharmacol. 2007, 109, 325-330. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  26. Ozma, M.A.; Khodadadi, E.; Pakdel, F.; Kamounah, F.S.; Yousefi, M.; Yousefi, B.; Asgharzadeh, M.; Ganbarov, K.; Kafil, H.S. Baicalin, a Natural Antimicrobial and Anti-Biofilm Agent. J. Herb. Med. 2021, 27, 100432. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  27. Ren, M.; Zhao, Y.; He, Z.; Lin, J.; Xu, C.; Liu, F.; Hu, R.; Deng, H.; Wang, Y. Baicalein Inhibits Inflammatory Response and Promotes Osteogenic Activity in Periodontal Ligament Cells Challenged with Lipopolysaccharides. BMC Complementary Med. Ther. 2021, 21, 43. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  28. Chen, L.-J.; Hu, B.-B.; Shi, X.-L.; Ren, M.-M.; Yu, W.-B.; Cen, S.-D.; Hu, R.-D.; Deng, H. Baicalein Enhances the Osteogenic Differentiation of Human Periodontal Ligament Cells by Activating the Wnt/β-Catenin Signaling Pathway. Arch. Oral Biol. 2017, 78, 100-108. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  29. Jang, S.; Bak, E.J.; Kim, M.; Kim, J.M.; Chung, W.-Y.; Cha, J.-H.; Yoo, Y.-J. Wogonin Inhibits Osteoclast Formation Induced by Lipopolysaccharide. Phytother. Res. 2010, 24, 964-968. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  30. Arancibia, R.; Maturana, C.; Silva, D.; Tobar, N.; Tapia, C.; Salazar, J.C.; Martínez, J.; Smith, P.C. Effects of Chitosan Particles in Periodontal Pathogens and Gingival Fibroblasts. J. Dent Res. 2013, 92, 740-745. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  31. Kmiec, M.; Pighinelli, L.; Tedesco, M.; Silva, M.; dos Reis, V. Chitosan-Properties and Applications in Dentistry. Adv. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 2, 1-7. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  32. Pignatello, R.; Basile, L.; Puglisi, G. Chitosan Glutamate Hydrogels with Local Anesthetic Activity for Buccal Application. Drug Deliv. 2009, 16, 176-181. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  33. Xu, J.; Strandman, S.; Zhu, J.X.X.; Barralet, J.; Cerruti, M. Genipin-Crosslinked Catechol-Chitosan Mucoadhesive Hydrogels for Buccal Drug Delivery. Biomaterials 2015, 37, 395-404. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  34. Wang, B.; Booij-Vrieling, H.E.; Bronkhorst, E.M.; Shao, J.; Kouwer, P.H.J.; Jansen, J.A.; Walboomers, X.F.; Yang, F. Antimicrobial and Anti-Inflammatory Thermo-Reversible Hydrogel for Periodontal Delivery. Acta Biomater. 2020, 116, 259-267. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  35. Ji, Q.X.; Zhao, Q.S.; Deng, J.; Lü, R. A Novel Injectable Chlorhexidine Thermosensitive Hydrogel for Periodontal Application: Preparation, Antibacterial Activity and Toxicity Evaluation. J. Mater. Sci. Mater. Med. 2010, 21, 2435-2442. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  36. Pakzad, Y.; Ganji, F. Thermosensitive Hydrogel for Periodontal Application: In Vitro Drug Release, Antibacterial Activity and Toxicity Evaluation. J. Biomater. Appl. 2016, 30, 919-929. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  37. Dumortier, G.; Grossiord, J.L.; Agnely, F.; Chaumeil, J.C. A Review of Poloxamer 407 Pharmaceutical and Pharmacological Characteristics. Pharm. Res. 2006, 23, 2709-2728. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  38. Fakhari, A.; Corcoran, M.; Schwarz, A. Thermogelling Properties of Purified Poloxamer 407. Heliyon 2017, 3. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  39. Osmałek, T.; Froelich, A.; Tasarek, S. Application of Gellan Gum in Pharmacy and Medicine. Int. J. Pharm. 2014, 466, 328-340. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  40. Banerjee, S.; Singh, S.; Bhattacharya, S.S.; Chattopadhyay, P. Trivalent Ion Cross-Linked PH Sensitive Alginate-Methyl Cellulose Blend Hydrogel Beads from Aqueous Template. Int. J. Biol. Macromol. 2013, 57, 297-307. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  41. Wathoni, N.; Yuniarsih, N.; Cahyanto, A.; Muhctaridi, M. α-Mangostin Hydrogel Film Based Chitosan-Alginate for Recurrent Aphthous Stomatitis. Appl. Sci. 2019, 9, 5235. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  42. Liang, H.-F.; Hong, M.-H.; Ho, R.-M.; Chung, C.-K.; Lin, Y.-H.; Chen, C.-H.; Sung, H.-W. Novel Method Using a Temperature- Sensitive Polymer (Methylcellulose) to Thermally Gel Aqueous Alginate as a PH-Sensitive Hydrogel. Biomacromolecules 2004, 5, 1917-1925. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  43. Bansal, K.; Rawat, M.K.; Jain, A.; Rajput, A.; Chaturvedi, T.P.; Singh, S. Development of Satranidazole Mucoadhesive Gel for the Treatment of Periodontitis. AAPS PharmSciTech 2009, 10, 716-723. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  44. Joshi, S.C. Sol-Gel Behavior of Hydroxypropyl Methylcellulose (HPMC) in Ionic Media Including Drug Release. Materials 2011, 4, 1861-1905. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  45. Arweiler, N.B.; Pergola, G.; Kuenz, J.; Hellwig, E.; Sculean, A.; Auschill, T.M. Clinical and Antibacterial Effect of an Anti- Inflammatory Toothpaste Formulation with Scutellaria Baicalensis Extract on Experimental Gingivitis. Clin. Oral Investig. 2011, 15, 909-913. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  46. Kim, Y.-R.; Nam, S.-H. The Effects of Scutellariae Radix Extract Gargling Solution on the Prevention of Periodontal Disease. Biomed. Res. 2017, 0, 557-562.
  47. Patil, A.G.; Patil, P.; Jobanputra, A.H.; Verma, D. Herbal Formulations for Treatment of Dental Diseases: Perspectives, Potential, and Applications. In Engineering Interventions in Foods and Plants; Apple Academic Press: Florida, FA, USA, 2017. otwiera się w nowej karcie
  48. Pappu, R.; Varghese, J.; Koteshwara, K.; Kamath, V.; Lobo, R.; Nimmy, K. Evaluation of Biodegradable Gel Containing Flax Seed Extract (Linum Usitatissimum) as a Targeted Drug Delivery for Management of Chronic Periodontitis. J. Herb. Med. 2019, 15, 100254. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  49. Pai, M.R.; Acharya, L.D.; Udupa, N. Evaluation of Antiplaque Activity of Azadirachta Indica Leaf Extract Gel-a 6-Week Clinical Study. J. Ethnopharmacol. 2004, 90, 99-103. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  50. Safiaghdam, H.; Oveissi, V.; Bahramsoltani, R.; Farzaei, M.H.; Rahimi, R. Medicinal Plants for Gingivitis: A Review of Clinical Trials. Iran J. Basic. Med. Sci. 2018, 21, 978-991. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  51. Forouzanfar, F.; Forouzanfar, A.; Sathyapalan, T.; Orafai, H.M.; Sahebkar, A. Curcumin for the Management of Periodontal Diseases: A Review. Curr. Pharm. Des. 2020, 26, 4277-4284. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  52. Prabaharan, M.; Mano, J.F. Chitosan-Based Particles as Controlled Drug Delivery Systems. Drug Deliv. 2004, 12, 41-57. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  53. European Medicines Agency. European Pharmacopoeia (04/2011:2438) Monograph Scutellariae Baicalensis Radix; EDQM Council of Europe: Strasbourg, France, 2011; pp. 1262-1263. otwiera się w nowej karcie
  54. Lee, K.J.; Jung, P.M.; Oh, Y.-C.; Song, N.-Y.; Kim, T.; Ma, J.Y. Extraction and Bioactivity Analysis of Major Flavones Compounds from Scutellaria Baicalensis Using In Vitro Assay and Online Screening HPLC-ABTS System. Available online: https://www. hindawi.com/journals/jamc/2014/563702/ (accessed on 19 February 2021). otwiera się w nowej karcie
  55. Wang, R.; Luo, J.; Kong, L. Screening of Radical Scavengers in Scutellaria Baicalensis Using HPLC with Diode Array and Chemiluminescence Detection. J. Sep. Sci. 2012, 35, 2223-2227. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  56. ICH. Validation of analytical procedures Q2(R2). In Proceedings of the International Conference of Harmonisation, Geneva, Switzerland, 14 November 2018.
  57. Unsalan, O.; Erdogdu, Y.; Gulluoglu, M.T. FT-Raman and FT-IR Spectral and Quantum Chemical Studies on Some Flavonoid Derivatives: Baicalein and Naringenin. J. Raman Spectrosc. 2009, 40, 562-570. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  58. Xu, C.-H.; Liu, S.-L.; Zhao, S.-N.; Li, S.-Z.; Sun, S.-Q. Unveiling Ontogenesis of Herbal Medicine in Plant Chemical Profiles by Infrared Macro-Fingerprinting. Planta Med. 2013, 79, 1068-1076. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  59. Yan, T.; Cheng, Y.; Wang, Z.; Huang, D.; Miao, H.; Zhang, Y. Preparation and Characterization of Baicalein Powder Micronized by the SEDS Process. J. Supercrit. Fluids 2015, 104, 177-182. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  60. Fernandes Queiroz, M.; Melo, K.R.T.; Sabry, D.A.; Sassaki, G.L.; Rocha, H.A.O. Does the Use of Chitosan Contribute to Oxalate Kidney Stone Formation? Mar. Drugs 2014, 13, 141-158. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  61. Grimling, B.; Jasińska, J.; Meler, J.; Szcześniak, M.; Pluta, J.; Górniak, A. Physicochemical Characterization and Dissolution Studies of Solid Dispersions of Clotrimazole with Chitosan. Prog. Chem. Appl. Chitin Its Deriv. 2016, 21. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  62. Wang, X.; Tang, R.; Zhang, Y.; Yu, Z.; Qi, C. Preparation of a Novel Chitosan Based Biopolymer Dye and Application in Wood Dyeing. Polymers 2016, 8, 338. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  63. Oh, J.-W.; Chun, S.C.; Chandrasekaran, M. Preparation and In Vitro Characterization of Chitosan Nanoparticles and Their Broad-Spectrum Antifungal Action Compared to Antibacterial Activities against Phytopathogens of Tomato. Agronomy 2019, 9, 21. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  64. Maestrelli, F.; Zerrouk, N.; Chemtob, C.; Mura, P. Influence of Chitosan and Its Glutamate and Hydrochloride Salts on Naproxen Dissolution Rate and Permeation across Caco-2 Cells. Int. J. Pharm. 2004, 271, 257-267. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  65. Udrea, A.-M.; Mernea, M.; Buiu, C.; Avram, S. Scutellaria Baicalensis Flavones as Potent Drugs against Acute Respiratory Injury during SARS-CoV-2 Infection: Structural Biology Approaches. Processes 2020, 8, 1468. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  66. Song, J.-W.; Long, J.-Y.; Xie, L.; Zhang, L.-L.; Xie, Q.-X.; Chen, H.-J.; Deng, M.; Li, X.-F. Applications, Phytochemistry, Pharmaco- logical Effects, Pharmacokinetics, Toxicity of Scutellaria Baicalensis Georgi. and Its Probably Potential Therapeutic Effects on COVID-19: A Review. Chin. Med. 2020, 15, 102. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  67. Sohi, H.; Ahuja, A.; Ahmad, F.J.; Khar, R.K. Critical Evaluation of Permeation Enhancers for Oral Mucosal Drug Delivery. Drug Dev. Ind. Pharm. 2010, 36, 254-282. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  68. Liang, W.; Huang, X.; Chen, W. The Effects of Baicalin and Baicalein on Cerebral Ischemia: A Review. Aging Dis. 2017, 8, 850-867. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  69. Akao, T.; Kawabata, K.; Yanagisawa, E.; Ishihara, K.; Mizuhara, Y.; Wakui, Y.; Sakashita, Y.; Kobashi, K. Baicalin, the Predominant Flavone Glucuronide of Scutellariae Radix, Is Absorbed from the Rat Gastrointestinal Tract as the Aglycone and Restored to Its Original Form. J. Pharm. Pharmacol. 2000, 52, 1563-1568. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  70. Varela-López, A.; Bullón, P.; Giampieri, F.; Quiles, J.L. Non-Nutrient, Naturally Occurring Phenolic Compounds with Antioxidant Activity for the Prevention and Treatment of Periodontal Diseases. Antioxidants 2015, 4, 447-481. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  71. Ramesh, A.; Varghese, S.S.; Doraiswamy, J.N.; Malaiappan, S. Herbs as an Antioxidant Arsenal for Periodontal Diseases. J. Intercult. Ethnopharmacol. 2016, 5, 92-96. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  72. Talmaç, A.C.; Çalişir, M. Antioxidants and Periodontal Diseases. Gingival Dis.-A Prof. Approach Treat. Prev. 2019. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  73. Pisoschi, A.M.; Pop, A.; Cimpeanu, C.; Predoi, G. Antioxidant Capacity Determination in Plants and Plant-Derived Products: A Review. Oxid. Med. Cell. Longev. 2016, 2016. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  74. Amorati, R.; Valgimigli, L. Methods to Measure the Antioxidant Activity of Phytochemicals and Plant Extracts. J. Agric. Food Chem. 2018, 66, 3324-3329. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  75. Kurutas, E.B. The Importance of Antioxidants Which Play the Role in Cellular Response against Oxidative/Nitrosative Stress: Current State. Nutr. J. 2016, 15, 71. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  76. Nallamuthu, I.; Devi, A.; Khanum, F. Chlorogenic Acid Loaded Chitosan Nanoparticles with Sustained Release Property, Retained Antioxidant Activity and Enhanced Bioavailability. Asian J. Pharm. Sci. 2015, 10, 203-211. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  77. Li, K.; Fan, H.; Yin, P.; Yang, L.; Xue, Q.; Li, X.; Sun, L.; Liu, Y. Structure-Activity Relationship of Eight High Content Flavonoids Analyzed with a Preliminary Assign-Score Method and Their Contribution to Antioxidant Ability of Flavonoids-Rich Extract from Scutellaria Baicalensis Shoots. Arab. J. Chem. 2018, 11, 159-170. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  78. Wu, C.; Wang, L.; Fang, Z.; Hu, Y.; Chen, S.; Sugawara, T.; Ye, X. The Effect of the Molecular Architecture on the Antioxidant Properties of Chitosan Gallate. Mar. Drugs 2016, 14, 95. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  79. Kamil, J.Y.V.A.; Jeon, Y.-J.; Shahidi, F. Antioxidative Activity of Chitosans of Different Viscosity in Cooked Comminuted Flesh of Herring (Clupea Harengus). Food Chem. 2002, 79, 69-77. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  80. Xie, W.; Xu, P.; Liu, Q. Antioxidant Activity of Water-Soluble Chitosan Derivatives. Bioorg. Med. Chem. Lett. 2001, 11, 1699-1701. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  81. Perez, C.A.; Wei, Y.; Guo, M. Iron-Binding and Anti-Fenton Properties of Baicalein and Baicalin. J. Inorg. Biochem. 2009, 103, 326-332. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  82. Mladěnka, P.; Macáková, K.; Filipský, T.; Zatloukalová, L.; Jahodář, L.; Bovicelli, P.; Silvestri, I.P.; Hrdina, R.; Saso, L. In Vitro Analysis of Iron Chelating Activity of Flavonoids. J. Inorg. Biochem. 2011, 105, 693-701. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  83. Yamalik, N.; Kilinç, K.; Caglayan, F.; Eratalay, K.; Caglayan, G. Molecular Size Distribution Analysis of Human Gingival Proteoglycans and Glycosaminoglycans in Specific Periodontal Diseases. J. Clin. Periodontol. 1998, 25, 145-152. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  84. Scheibner, K.A.; Lutz, M.A.; Boodoo, S.; Fenton, M.J.; Powell, J.D.; Horton, M.R. Hyaluronan Fragments Act as an Endogenous Danger Signal by Engaging TLR2. J. Immunol. 2006, 177, 1272-1281. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  85. Tanimoto, K.; Nakatani, Y.; Tanaka, N.; Ueki, M.; Yanagida, T.; Kitamura, R.; Tanne, Y.; Lin, Y.Y.; Kunimatsu, R.; Tanne, K. Inhibition of the Proliferation of Human Periodontal Ligament Fibroblasts by Hyaluronidase. Arch. Oral Biol. 2008, 53, 330-336. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  86. Jiang, D.; Liang, J.; Noble, P.W. Hyaluronan as an Immune Regulator in Human Diseases. Physiol. Rev. 2011, 91, 221-264. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  87. Dahiya, P.; Kamal, R. Hyaluronic Acid: A Boon in Periodontal Therapy. N. Am. J. Med. Sci. 2013, 5, 309-315. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  88. Moseley, R.; Waddington, R.J.; Embery, G. Hyaluronan and Its Potential Role in Periodontal Healing. Dent Update 2002, 29, 144-148. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  89. Powell, J.D.; Horton, M.R. Threat Matrix. Low-molecular-weight hyaluronan (HA) as a danger signal. Immunol. Res. 2005, 31, 207-218. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  90. Petrey, A.C.; de la Motte, C.A. Hyaluronan, a Crucial Regulator of Inflammation. Front. Immunol. 2014, 5. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  91. Kuppusamy, U.R.; Khoo, H.E.; Das, N.P. Structure-Activity Studies of Flavonoids as Inhibitors of Hyaluronidase. Biochem. Pharmacol. 1990, 40, 397-401. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  92. Nema, N.K.; Maity, N.; Sarkar, B.K.; Mukherjee, P.K. Matrix Metalloproteinase, Hyaluronidase and Elastase Inhibitory Potential of Standardized Extract of Centella Asiatica. Pharm. Biol. 2013, 51, 1182-1187. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  93. Liana, L.; Rizal, R.; Widowati, W.; Lee, F.; Akbar, K.; Fachrial, E.; Lister, I.N. Antioxidant and Anti-Hyaluronidase Activities of Dragon Fruit Peel Extract and Kaempferol-3-O-Rutinoside. J. Kedokt. Brawijaya 2019, 30, 247. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  94. Kakegawa, H.; Matsumoto, H.; Satoh, T. Inhibitory Effects of Some Natural Products on the Activation of Hyaluronidase and Their Anti-Allergic Actions. Chem. Pharm. Bull. 1992, 40, 1439-1442. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  95. Lee, J.-H.; Kim, G.-H. Evaluation of Antioxidant and Inhibitory Activities for Different Subclasses Flavonoids on Enzymes for Rheumatoid Arthritis. J. Food Sci. 2010, 75, H212-H217. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  96. Zeng, H.; Hu, G.; You, J.; Yang, R.; Qu, L. Spectroscopic and Molecular Modeling Investigation on the Interactions between Hyaluronidase and Baicalein and Chrysin. Process. Biochem. 2015, 50, 738-745. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  97. Tigga, K.; Marandi, U.; Samdershi, D.; Besra, S. In-Vitro Hyaluronidase Inhibition Assay of Chitosan Extracted from Exoskeleton of Freshwater Edible Crab Sartoriana Spinigera. J. Exp. Zool. India 2019, 22, 1229-1233. otwiera się w nowej karcie
  98. Mao, S.; Liu, X.; Xia, W. Chitosan Oligosaccharide-g-Linalool Polymer as Inhibitor of Hyaluronidase and Collagenase Activity. Int. J. Biol. Macromol. 2021, 166, 1570-1577. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  99. Carrol, D.H.; Chassagne, F.; Dettweiler, M.; Quave, C.L. Antibacterial Activity of Plant Species Used for Oral Health against Porphyromonas Gingivalis. PLoS ONE 2020, 15, e0239316. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  100. Da, X.; Nishiyama, Y.; Tie, D.; Hein, K.Z.; Yamamoto, O.; Morita, E. Antifungal Activity and Mechanism of Action of Ou-Gon (Scutellaria Root Extract) Components against Pathogenic Fungi. Sci. Rep. 2019, 9, 1683. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  101. Yin, B.; Li, W.; Qin, H.; Yun, J.; Sun, X. The Use of Chinese Skullcap (Scutellaria Baicalensis) and Its Extracts for Sustainable Animal Production. Animals 2021, 11, 1039. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  102. Goy, R.C.; Britto, D. de Assis, O.B.G. A Review of the Antimicrobial Activity of Chitosan. Polímeros 2009, 19, 241-247. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  103. Sahariah, P.; Másson, M. Antimicrobial Chitosan and Chitosan Derivatives: A Review of the Structure-Activity Relationship. Biomacromolecules 2017, 18, 3846-3868. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  104. Mohamed, N.A.; Fahmy, M.M. Synthesis and Antimicrobial Activity of Some Novel Cross-Linked Chitosan Hydrogels. Int. J. Mol. Sci. 2012, 13, 11194-11209. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  105. Yaprak (Hızarcıoglu) Karavana, S.; Güneri, P.; Ertan, G. Benzydamine Hydrochloride Buccal Bioadhesive Gels Designed for Oral Ulcers: Preparation, Rheological, Textural, Mucoadhesive and Release Properties. Pharm. Dev. Technol. 2009, 14, 623-631. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  106. Baloglu, E.; Karavana, S.Y.; Senyigit, Z.A.; Guneri, T. Rheological and Mechanical Properties of Poloxamer Mixtures as a Mucoadhesive Gel Base. Pharm. Dev. Technol. 2011, 16, 627-636. [CrossRef] [PubMed] otwiera się w nowej karcie
  107. Shapovalov, V.M. On the Applicability of the Ostwald-De Waele Model in Solving Applied Problems. J. Eng. Phys. Thermophy. 2017, 90, 1213-1218. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  108. Kim, J.-Y.; Song, J.-Y.; Lee, E.-J.; Park, S.-K. Rheological Properties and Microstructures of Carbopol Gel Network System. Colloid Polym. Sci. 2003, 281, 614-623. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  109. Lopez, C.G.; Richtering, W. Oscillatory Rheology of Carboxymethyl Cellulose Gels: Influence of Concentration and PH. Carbohydr. Polym. 2021, 267, 118117. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  110. Roy, N.; Saha, N.; Kitano, T.; Saha, P. Importance of Viscoelastic Property Measurement of a New Hydrogel for Health Care. AIP Conf. Proc. 2009, 1152, 210-216. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  111. Roy, N.; Saha, N.; Kitano, T.; Saha, P. Novel Hydrogels of PVP-CMC and Their Swelling Effect on Viscoelastic Properties. J. Appl. Polym. Sci. 2010, 117, 1703-1710. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  112. Ng, S.-F.; Rouse, J.J.; Sanderson, F.D.; Meidan, V.; Eccleston, G.M. Validation of a Static Franz Diffusion Cell System for In Vitro Permeation Studies. AAPS PharmSciTech 2010, 11, 1432-1441. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  113. Zillich, O.V.; Schweiggert-Weisz, U.; Hasenkopf, K.; Eisner, P.; Kerscher, M. Release and in vitro skin permeation of polyphenols from cosmetic emulsions. Int. J. Cosmet. Sci. 2013, 35, 491-501. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  114. Franz-Montan, M.; Serpe, L.; Martinelli, C.C.M.; da Silva, C.B.; Santos, C.P.D.; Novaes, P.D.; Volpato, M.C.; de Paula, E.; Lopez, R.F.V.; Groppo, F.C. Evaluation of Different Pig Oral Mucosa Sites as Permeability Barrier Models for Drug Permeation Studies. Eur. J. Pharm. Sci. 2016, 81, 52-59. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  115. Swarbrick, J. Encyclopedia of Pharmaceutical Technology, 3rd ed.; Tom 2; Informa Healthcare: New York, NY, USA, 2007. otwiera się w nowej karcie
  116. Dissolution test for solid dosage forms. In European Pharmacopoeia, 10th ed.; Council of Europe: Strasbourg, France, 2020; Chapter 2.9.3. otwiera się w nowej karcie
  117. Moore, J.W.; Flanner, H.H. Mathematical Comparison of Dissolution Profiles. Pharm. Technol. 1996, 20, 64-75.
  118. Paczkowska, M.; Chanaj-Kaczmarek, J.; Romaniuk-Drapała, A.; Rubiś, B.; Szymanowska, D.; Kobus-Cisowska, J.; Szymańska, E.; Winnicka, K.; Cielecka-Piontek, J. Mucoadhesive Chitosan Delivery System with Chelidonii Herba Lyophilized Extract as a Promising Strategy for Vaginitis Treatment. J. Clin. Med. 2020, 9, 1208. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  119. Fischer, H.; Kansy, M.; Avdeef, A.; Senner, F. Permeation of Permanently Positive Charged Molecules through Artificial Membranes-Influence of Physico-Chemical Properties. Eur. J. Pharm. Sci. 2007, 31, 32-42. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  120. Re, R.; Pellegrini, N.; Proteggente, A.; Pannala, A.; Yang, M.; Rice-Evans, C. Antioxidant Activity Applying an Improved ABTS Radical Cation Decolorization Assay. Free Radic. Biol. Med. 1999, 26, 1231-1237. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  121. Dinis, T.C.; Maderia, V.M.; Almeida, L.M. Action of Phenolic Derivatives (Acetaminophen, Salicylate, and 5-Aminosalicylate) as Inhibitors of Membrane Lipid Peroxidation and as Peroxyl Radical Scavengers. Arch Biochem. Biophys. 1994, 315, 161-169. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  122. Studzińska-Sroka, E.; Dudek-Makuch, M.; Chanaj-Kaczmarek, J.; Czepulis, N.; Korybalska, K.; Rutkowski, R.; Łuczak, J.; Grabowska, K.; Bylka, W.; Witowski, J. Anti-Inflammatory Activity and Phytochemical Profile of Galinsoga Parviflora Cav. Molecules 2018, 23, 2133. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  123. Adamczak, A.; Ożarowski, M.; Karpiński, T.M. Antibacterial Activity of Some Flavonoids and Organic Acids Widely Distributed in Plants. J. Clin. Med. 2019, 9, 109. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  124. Adamczak, A.; Ożarowski, M.; Karpiński, T.M. Curcumin, a Natural Antimicrobial Agent with Strain-Specific Activity. Pharma- ceuticals 2020, 13, 153. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  125. Szymanska, E.; Sosnowska, K.; Miltyk, W.; Rusak, M.; Basa, A.; Winnicka, K. The Effect of β-Glycerophosphate Crosslinking on Chitosan Cytotoxicity and Properties of Hydrogels for Vaginal Application. Polymers 2015, 7, 2223-2244. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  126. Paczkowska-Walendowska, M.; Dvořák, J.; Rosiak, N.; Tykarska, E.; Szymańska, E.; Winnicka, K.; Ruchała, M.A.; Cielecka- Piontek, J. Buccal Resveratrol Delivery System as a Potential New Concept for the Periodontitis Treatment. Pharmaceutics 2021, 13, 417. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
  127. Bassi da Silva, J.; Ferreira, S.B.D.S.; Reis, A.V.; Cook, M.T.; Bruschi, M.L. Assessing Mucoadhesion in Polymer Gels: The Effect of Method Type and Instrument Variables. Polymers 2018, 10, 254. [CrossRef] otwiera się w nowej karcie
Weryfikacja:
Brak weryfikacji

wyświetlono 117 razy

Publikacje, które mogą cię zainteresować

Meta Tagi